基础研究 Open Access
Copyright ©The Author(s) 2019. Published by Baishideng Publishing Group Inc. All rights reserved.
世界华人消化杂志. 2019-04-28; 27(8): 477-484
在线出版日期: 2019-04-28. doi: 10.11569/wcjd.v27.i8.477
姜黄素调节miR-133a表达对肝癌细胞迁移和侵袭的影响
袁洪波, 孟佩盈, 戚柳杰
袁洪波, 孟佩盈, 戚柳杰, 诸暨市中心医院内二科 浙江省诸暨市 311800
袁洪波, 主治医师, 主要从事内科疾病的研究.
ORCID number: 袁洪波 (0000-0001-5845-218X); 孟佩盈 (0000-0003-3663-2766).
作者贡献分布: 由袁洪波与孟佩盈设计; 研究过程由袁洪波、孟佩盈及戚柳杰操作完成; 研究所用新试剂及分析工具由戚柳杰提供; 数据分析由孟佩盈与戚柳杰完成; 本论文写作由袁洪波、孟佩盈及戚柳杰完成.
通讯作者: 袁洪波, 主治医师, 311800, 浙江省诸暨市暨阳街道朱公路98号, 诸暨市中心医院内二科. m13838734866@163.com
电话: 0575-87212422
收稿日期: 2019-01-25
修回日期: 2019-02-27
接受日期: 2019-03-15
在线出版日期: 2019-04-28

背景

姜黄素对包括肝癌在内的多种肿瘤的发生发展表现出较好的抑制作用, 但其抗肝癌的作用机制尚不完全清晰. 有研究发现, 姜黄素可通过调控miR-133a表达抑制胃癌细胞增殖和转移; miR-133a在肝癌中低表达的结果已有数据证实, 但姜黄素是否介导miR-133a表达发挥抗肝癌的作用并不清楚.

目的

探讨姜黄素调节miR-133a表达对肝癌细胞迁移和侵袭的影响.

方法

以姜黄素(0、10、20 μmol/L)处理肝癌SMMC-7721细胞48 h后, MTT法检测细胞活力, Transwell小室检测细胞的迁移和侵袭; RT-PCR检测细胞中miR-133a表达. 采用RT-PCR检测正常肝LO2细胞和肝癌SMMC-7721细胞中miR-133a表达; 将miR-133a模拟物转染至SMMC-7721细胞后, Transwell小室检测miR-133a对姜黄素作用前后细胞迁移和侵袭的影响.

结果

姜黄素能够有效抑制SMMC-7721细胞活力(10 μmol/L姜黄素存活率: 0.71±0.07 vs 1.02±0.09; 20 μmol/L姜黄素存活率: 0.45±0.05 vs 1.02±0.09)、迁移(52.32±5.48 vs 121.43±12.35 )和侵袭(46.33±5.38 vs 109.25±10.75), 上调miR-133a表达(10 μmol/L姜黄素: 1.62±0.11 vs 1.00±0.09; 20 μmol/L姜黄素: 2.96±0.25 vs 1.00±0.09); 与LO2细胞相比, SMCC-7721细胞中miR-133a的表达水平明显降低(0.32±0.03 vs 1.03±0.08); 上调miR-133a表达后, SMCC-7721细胞的迁移(32.84±3.95 vs 96.35±9.08)和侵袭(42.75±5.06 vs 119.32±11.71)能力均明显减弱, 同时姜黄素对SMCC-7721细胞迁移(29.6±3.32 vs 134.62±13.41)和侵袭(31.86±4.05 vs 129.73±12.74)的抑制作用增强.

结论

姜黄素可通过上调miR-133a表达抑制肝癌细胞的迁移和侵袭.

关键词: 肝癌; 姜黄素; miR-133a; 迁移; 侵袭

核心提要: 姜黄素可抑制肝癌SMCC-7721细胞活力、侵袭和迁移, 同时上调miR-133a表达; 采用脂质体法转染miR-133a模拟物上调miR-133a表达后, SMCC-7721细胞的侵袭和迁移能力明显减弱, 并能够与姜黄素协调起到抑制SMCC-7721细胞侵袭和迁移的作用.


引文著录: 袁洪波, 孟佩盈, 戚柳杰. 姜黄素调节miR-133a表达对肝癌细胞迁移和侵袭的影响. 世界华人消化杂志 2019; 27(8): 477-484
Curcumin up-regulates miR-133a expression to inhibit hepatocellular carcinoma cell migration and invasion
Hong-Bo Yuan, Pei-Ying Meng, Liu-Jie Qi
Hong-Bo Yuan, Pei-Ying Meng, Liu-Jie Qi, Second Department of Internal Medicine, Zhuji Central Hospital, Zhuji 311800, Zhejiang Province, China
Corresponding author: Hong-Bo Yuan, Chief Physician, Second Department of Internal Medicine, Zhuji Central Hospital, 98 Zhugong Road, Jiyang Street, Zhuji 311800, Zhejiang Province, China. m13838734866@163.com
Received: January 25, 2019
Revised: February 27, 2019
Accepted: March 15, 2019
Published online: April 28, 2019

BACKGROUND

Curcumin has a good inhibitory effect on the occurr-ence and development of many kinds of tumors, including hepatocellular carcinoma, but its anti-hepatocellular carcinoma mechanism is not completely clear. Some studies have found that curcumin can inhibit the proliferation and metastasis of gastric cancer cells by regulating the expression of miR-133a. The low expression of miR-133a in hepatocellular carcinoma has been confirmed by data, but whether curcumin regulated expression of miR-133a plays an anti-hepatocellular carcinoma role is not clear.

AIM

To investigate the effect of curcumin on the migration and invasion of hepatocellular carcinoma cells and explore the underlying mechanism by detecting the expression of miR-133a.

METHODS

After treatment of liver cancer SMMC-7721 cells with curcumin (0, 10, and 20 μmol/L) for 48 h, cell viability was detected by MTT assay, cell migration and invasion were measured by transwell assay, and the expression of miR-133a in the cells was detected by RT-PCR. The expression of miR-133a in normal liver LO2 cells and hepatocellular carcinoma SMMC-7721 cells was detected by RT-PCR. After transfection with miR-133a analogue to SMMC-7721 cells, the effect of miR-133a on migration and invasion of cells before and after curcumin treatment was detected by transwell assay.

RESULTS

Curcumin effectively inhibited SMMC-7721 cell viability (10 μmol/L curcumin: 0.71 + 0.07 vs 1.02 + 0.09; 20 μmol/L: 0.45 + 0.05 vs 1.02 + 0.09), migration (52.32 ± 5.48 vs 121.43 ± 12.35), and invasion (46.33 ± 5.38 vs 109.25 ± 10.75) and increased miR-133a expression (10 μmol/L curcumin: 1.62 ± 0.11 vs 1.00 ± 0.09; 20 μmol/L: 2.96 ± 0.25 vs 1.00 ± 0.09). Compared with LO2 cells, the expression level of miR-133a (0.32 ± 0.03 vs 1.03 ± 0.08) in SMCC-7721 cells was decreased obviously. After increasing the expression of miR-133a, the migration (32.84 ± 3.95 vs 96.35 ± 9.08) and invasion (42.75 ± 5.06 vs 119.32 ± 11.71) of SMCC-7721 cells were significantly decreased, and the inhibitory effect of curcumin on migration (29.6 ± 3.32 vs 134.62 ± 13.41) and invasion (31.86 ± 4.05 vs 129.73 ± 12.74) of SMCC-7721 cells was enhanced.

CONCLUSION

Curcumin can inhibit the migration and invasion of hepatoma cells by up-regulating the expression of miR-133a.

Key Words: Liver cancer; Curcumin; miR-133a; Migration; Invasion


0 引言

有"癌中之王"之称的肝癌是临床上最为常见的恶性肿瘤, 术后的复发和转移是影响肝癌治疗的重要因素, 如何抑制肝癌的复发和转移提高患者的生存率是临床上的一大难题. 除传统的手术治疗外, 放疗和化疗的治疗并不理想, 往往会伴有毒副作用的产生, 慢慢地安全有效的中药及其成分逐渐进入人们的视野. 姜黄素是一种具有抗氧化、抗炎、降血脂和抗肿瘤等活性的多酚类化合物, 其抗肿瘤的作用备受学者们的关注. 越来越多的研究[1-3]发现, 姜黄素对胃癌、食管癌和乳腺癌等多种肿瘤的发生发展均具有较好的抑制作用. 近年来有研究[4]报道, 姜黄素可通过调控miR-133a表达干预胃癌细胞增殖和转移. 研究[5,6]已证实, miR-133a在肝癌中低表达, 姜黄素可抑制肝癌细胞生长和转移, 但其有无调控miR-133a表达发挥抗肿瘤的作用并不清楚. 因此, 本研究通过体外细胞实验旨在探讨miR-133a在姜黄素抑制肝癌细胞迁移和侵袭中的作用.

1 材料和方法
1.1 材料

肝癌细胞系SMMC-7721和正常肝细胞系LO2购于中科院上海细胞库. RPMI1640培养基购于美国Gibco公司, 人工基底膜Matrigel、MTT试剂和姜黄素均购于美国Sigma公司, Trizol试剂购于美国LIFE公司, miR-133a模拟物及阴性对照购自上海吉玛公司. 逆转录试剂盒购于大连宝生物公司, Transwell小室(孔径8 μm)购于美国Coster公司.

1.2 方法

1.2.1 细胞培养: 采用含100 mL/L胎牛血清、100 U/mL青霉素和0.1 mg/mL链霉素的RPMI1640培养基, 在5%CO2的37 ℃恒温培养箱内常规培养SMMC-7721和LO2细胞. 定期观察, 每3 d换液一次. 当细胞汇合度达85%以上时, 加入0.25%胰蛋白酶消化传代. 收集对数生长期的细胞进行实验.

1.2.2 RT-PCR检测: 在收集到的SMMC-7721和LO2细胞中加入Trizol试剂提取总RNA, 并采用紫外分光光度计测定总RNA的浓度. 以逆转录试剂盒合成cDNA后, 以此为模板配置20 μL反应体系, 上PCR仪进行扩增. 反应条件: 95 ℃预变性5 min, (95 ℃变性30 s, 60 ℃退火30 s, 72 ℃延伸30 s)×35个循环. 其中, miR-133a(上游: 5'-GCCAAGCTGGTAAA-ATGGAA-3'和下游: 5'-TATGGTTTTGACGACTGTGTGAT-3')和内参U6(上游: 5'-CTCGCTTCGGCAGCACA-3'和下游: 5'-AACGCTTCACGAATTTGCG-3')引物序列由上海生工生物合成. 以2-△△CT法计算SMMC-7721和LO2细胞中miR-133a的相对表达量.

1.2.3 MTT检测: 取96孔细胞板, 将对数生长期的SMMC-7721细胞以每孔200 μL(细胞浓度为5×105个/mL)进行接种. 置于细胞培养箱中培养过夜, 次日将细胞随机分为三组: 对照组(0 μmol/L姜黄素)、10 μmol/L姜黄素处理组和20 μmol/L姜黄素处理组. 另设无细胞的空白组. 按照分组, 分别给药处理. 48 h后, 每孔中加入20 μL MTT溶液, 于培养箱内孵育4 h后, 加入二甲基亚砜震荡反应至紫色结晶完全溶解. 采用酶标仪选用490 nm检测波长检测各孔的吸光度值, 根据公式: 细胞存活率 = 100%×(药物处理组OD值-空白组OD值)/(对照组OD值-空白组OD值)计算SMMC-7721细胞的存活率. 并采用RT-PCR检测各组细胞中miR-133a的相对表达水平.

1.2.4 Transwell小室检测: 收集上述对照组和20 μmol/L姜黄素处理组的细胞, 以胰蛋白酶消化, 加无血清培养基重悬细胞, 调整细胞浓度为5×105个/ml. 细胞迁移实验: 取Transwell小室, 于上室中加入200 μL制备的对照组和20 μmol/L姜黄素处理组细胞悬液, 下室中加入600 μL含血清的RPMI1640培养基, 置于培养箱内培养24 h后, 取出小室, 以磷酸缓冲液洗涤后, 小心擦去上室的细胞. 以甲醛于4 ℃下固定15 min, 磷酸缓冲液洗涤后, 再以结晶紫染色30 min. 以磷酸缓冲液洗涤后, 晾干. 于倒置显微镜下, 选取5个视野观察细胞的个数即侵袭细胞数, 并拍照, 结果以均值表示. 细胞侵袭实验: 首先以Matrigel基质胶包被Transwell小室, 风干成胶后, 以无血清的培养基封闭30 min, 其他操作均与细胞迁移实验相同. 实验重复3次.

1.2.5 细胞转染: 取6孔细胞板, 以每孔2×105个细胞进行接种. 置于孵箱中常规培养, 待细胞密度达85%以上时, 进行瞬时转染. 实验随机分为阴性对照(miR-NC)组和miR-133a组, 根据LipofectamineTM2000转染试剂说明书步骤分别将miR-NC和miR-133a模拟物转染至SMMC-7721细胞中, 孵育6 h后, 换液继续培养. 培养48 h后, 检测各组细胞的迁移和侵袭情况. 另取一个6孔细胞板, 以每孔2×105个细胞进行接种, 置于孵箱中常规培养, 待细胞密度达85%以上时, 进行瞬时转染. 将细胞随机分为对照组(未做任何处理)、姜黄素组(以20 μmol/L姜黄素处理48 h)、姜黄素+阴性对照组(转染miR-NC后, 以20 μmol/L姜黄素处理48 h)和姜黄素+miR-133a组(转染miR-133a模拟物后, 以20 μM姜黄素处理48 h). 按照如上分组分别进行转染和姜黄素处理后, 检测各组细胞的迁移和侵袭情况.

统计学处理 数据以mean±SD形式表示, 采用SPSS 22.0进行统计学分析, 三组组间数据采用单因素方差分析, 方差齐性采用SNK-q检验, 两组组间采用独立样本t检验. P<0.05为差异有统计学意义.

2 结果
2.1 姜黄素抑制肝癌SMMC-7721细胞的活力

姜黄素(0、10、20 μmol/L) 处理48 h, MTT检测细胞活力, 结果见图1. 与对照组(0 μmol/L)相比, 10、20 μmol/L姜黄素处理组的细胞存活率均明显降低(P<0.05), 且在20 μmol/L姜黄素作用下SMMC-7721细胞活力的抑制效果最强.

图1
图1 不同浓度的姜黄素对肝癌SMMC-7721细胞活力的影响. aP<0.05, 与0 μmol/L组相比.
2.2 姜黄素抑制SMCC-7721细胞的迁移和侵袭

采用Transwell小室分别检测20 μmol/L姜黄素处理后, SMMC-7721细胞迁移和侵袭能力的变化, 结果见图2. 与对照组相比, 姜黄素处理后, SMMC-7721细胞的迁移个数和侵袭个数均明显减少(P<0.05).

图2
图2 姜黄素对SMCC-7721细胞迁移和侵袭的影响. A: 细胞迁移结果; B: 细胞侵袭结果. aP<0.05, 与对照组相比. 放大倍数: 200 ×.
2.3 姜黄素促进肝癌SMCC-7721细胞中miR-133a的表达

RT-PCR检测发现, 肝癌SMCC-7721细胞中miR-133a的表达水平较正常肝LO2细胞明显降低(P<0.05), 见图3A. 然而, 以10、20 μmol/L姜黄素处理48 h后, SMCC-7721细胞中miR-133a的表达水平呈浓度依赖性升高(P<0.05), 见图3B.

图3
图3 姜黄素对SMCC-7721细胞中miR-133a表达的影响. A: 正常肝LO2细胞和肝癌SMCC-7721细胞中miR-133a表达, aP<0.05,与LO2细胞相比; B: 姜黄素处理后, SMCC-7721细胞中miR-133a表达, cP<0.05, 与0 μmol/L组相比.
2.4 miR-133a过表达抑制SMCC-7721的迁移和侵袭

采用LipofectamineTM 2000转染miR-NC和miR-133a模拟物48 h后, 以Transwell小室检测SMCC-7721细胞的迁移和侵袭能力, 结果见图4. 与阴性对照组相比, miR-133a组细胞的迁移个数和侵袭个数均明显减弱(P<0.05).

图4
图4 miR-133a过表达对SMCC-7721细胞迁移和侵袭能力的影响. A: 细胞迁移结果; B: 细胞侵袭结果. aP<0.05, 与阴性对照组相比. 放大倍数: 200 ×.
2.5 miR-133a过表达增强姜黄素对SMCC-7721细胞迁移侵袭的抑制作用

采用Transwell小室进一步检测miR-133a过表达对姜黄素作用下SMCC-7721细胞迁移和侵袭的影响, 结果见图5. 20 μmol/L姜黄素处理后, SMCC-7721细胞的迁移和侵袭能力均明显减弱, 转染miR-NC未能影响姜黄素对SMCC-7721细胞的作用(P>0.05), 但转染miR-133a模拟物后, 姜黄素对SMCC-7721细胞迁移和侵袭的抑制作用明显增强(P<0.05).

图5
图5 miR-133a过表达对姜黄素作用下SMCC-7721细胞迁移和侵袭的影响. A:细胞迁移结果; B: 细胞侵袭结果. aP<0.05, 与姜黄素组相比; cP<0.05, 与姜黄素+阴性对照组相比.
3 讨论

肝癌是我国常见的消化系统恶性肿瘤, 严重威胁着人们的身体健康和生活质量. 目前, 肝癌的治疗仍以手术治疗、放疗和化疗为主. 随着医学领域的不断发展, 肝癌患者的总生存率虽有所提高, 但肝癌的治疗并未得到根本改善, 肝癌患者术后的复发率仍较高[7,8]. 如何安全有效的防治肿瘤细胞的转移对肝癌患者的治疗尤为重要. 因中药具有毒性小、效率高和价格低等优势, 中药抗肿瘤逐渐成为研究的热点. 姜黄素是从中药姜黄根茎中提取的一种活性成分, 已被证实在前列腺癌、胰腺癌和结肠癌中具有可喜的抗肿瘤细胞转移的作用[9-11]. 目前, 关于姜黄素抗肝癌细胞转移的作用已有报道. 例如: Zhang等[12]研究指出, 姜黄素能够增强二甲双胍对肝癌细胞增殖、侵袭、转移和血管生成的抑制作用; 邱伟等[13]报道证实, 姜黄素可通过下调MMP-2/9和COX-2的表达抑制肝癌细胞的增殖及侵袭. 但是, 姜黄素应用于临床治疗肝癌的理论依据还不够充分. 因此, 探讨姜黄素抗肝癌细胞转移的分子机制对姜黄素临床治疗肝癌具有重要意义.

大量研究[14-18]显示, miRNAs与肝癌的发生发展关系密切, 在肿瘤细胞的增殖、转移和凋亡等生物学过程中发挥着重要的调控作用. 如: miR-23b-3p在肝癌细胞中低表达, 与肝癌进展和复发时间关系密切[17]; miR-1260b在肝癌组织中高表达, miR-1260b的过度表达增加了肝癌细胞的迁移和侵袭[18]. miR-133a作为miRNAs家族成员, 在乳腺癌、胃癌和非小细胞肺癌等肿瘤中异常低表达, 与临床分期、淋巴结转移及生存时间密切相关, 上调其表达可抑制肿瘤细胞的增殖、迁移和侵袭[19-21]. 有研究[4]报道, 姜黄素可通过调控miR-133a表达干预胃癌细胞增殖和转移. 已有研究[22,23]证实, miR-133a在肝癌中低表达, 姜黄素可抑制肝癌细胞生长和转移, 但其有无通过调控miR-133a表达来发挥作用并不清楚. 本研究以姜黄素处理肝癌SMMC-7721细胞, 结果发现, 细胞活力、迁移和侵袭能力均明显受到抑制, 这与之前研究[23]的研究结果相吻合. 进一步观察姜黄素对肝癌细胞中miR-133a表达的影响发现, miR-133a表达呈浓度依赖性升高. 提示, 姜黄素可能通过上调miR-133a参与抗肝癌细胞转移的调控过程. 为了验证这一猜想, 本研究通过转染miR-133a模拟物上调SMMC-7721细胞中miR-133a表达后, 检测发现SMMC-7721细胞的迁移和侵袭能力均显著减弱. 该结果与miR-133a在胃癌和非小细胞肺癌中的抑癌作用相吻合[20,21]. 这提示, miR-133a在肝癌细胞的迁移和侵袭过程中发挥着重要的抑制作用. 同时发现, 上调miR-133a表达还能增强姜黄素对SMCC-7721细胞迁移和侵袭的抑制作用. 结果表明, 姜黄素可通过上调miR-133a表达抑制肝癌细胞的迁移和侵袭.

总之, miR-133a表达上调是姜黄素抗肝癌细胞转移的一个重要机制, 为姜黄素介导miRNAs发挥抗肿瘤作用提供了实验依据. 后期我们会进一步探讨姜黄素是如何通过上调miR-133a表达调控下游相关基因参与其抗肝癌转移的调控, 以期为姜黄素临床治疗肝癌提供新的参考依据.

文章亮点
实验背景

姜黄素对包括肝癌在内的多种肿瘤的发生发展表现出较好的抑制作用, 但其抗肝癌的作用机制尚不完全清晰. 有研究发现, 姜黄素可通过调控miR-133a表达抑制胃癌细胞增殖和转移; miR-133a在肝癌中低表达的结果已有数据证实, 但姜黄素是否介导miR-133a表达发挥抗肝癌的作用并不清楚.

实验动机

本研究旨在探讨miR-133a在姜黄素抑制肝癌细胞迁移和侵袭中的作用, 以期为姜黄素抗肝癌细胞转移提供新的实验依据.

实验目标

探讨姜黄素调节miR-133a表达对肝癌细胞迁移和侵袭的影响, 以期姜黄素抗肝癌细胞的机制提供新线索.

实验方法

以10、20 μmol/L姜黄素处理肝癌SMMC-7721细胞48 h后, 采用MTT法检测细胞活力, Transwell小室检测细胞的迁移和侵袭; RT-PCR检测细胞中miR-133a表达. 采用RT-PCR检测正常肝LO2细胞和肝癌SMMC-7721细胞中miR-133a表达; 采用脂质体法将miR-133a模拟物转染至SMMC-7721细胞后, Transwell小室检测姜黄素作用前后细胞迁移和侵袭.

实验结果

姜黄素可抑制SMMC-7721细胞活力、迁移和侵袭, 上调miR-133a表达. miR-133a在SMCC-7721细胞中的表达水平较LO2细胞明显降低. 上调miR-133a表达后, SMCC-7721细胞的迁移和侵袭能力均明显减弱, 同时可增强姜黄素对SMCC-7721细胞迁移和侵袭的抑制作用.

实验结论

姜黄素可上调miR-133a表达抑制肝癌细胞的迁移和侵袭. 这一结果进一步揭示了姜黄素抗肝癌细胞转移的分子机制, 也为姜黄素抗肝癌的发生发展提供了新的实验依据.

展望前景

本研究仅仅发现miR-133a表达上调是姜黄素抗肝癌细胞转移的一个重要机制, 但miR-133a是如何调控下游相关基因参与姜黄素抗肝癌转移的还有待深入探讨, 后期我们将继续致力于这方面的研究, 以期为姜黄素临床治疗肝癌提供新依据.

学科分类: 胃肠病学和肝病学

手稿来源地: 浙江省

同行评议报告分类

A级 (优秀): 0

B级 (非常好): B

C级 (良好): 0

D级 (一般): D

E级 (差): 0

编辑:崔丽君 电编:张砚梁

1.  Fu H, Wang C, Yang D, Wei Z, Xu J, Hu Z, Zhang Y, Wang W, Yan R, Cai Q. Curcumin regulates proliferation, autophagy, and apoptosis in gastric cancer cells by affecting PI3K and P53 signaling. J Cell Physiol. 2018;233:4634-4642.  [PubMed]  [DOI]
2.  Zheng BZ, Liu TD, Chen G, Zhang JX, Kang X. The effect of curcumin on cell adhesion of human esophageal cancer cell. Eur Rev Med Pharmacol Sci. 2018;22:551-560.  [PubMed]  [DOI]
3.  Wang R, Li J, Zhao Y, Li Y, Yin L. Investigating the therapeutic potential and mechanism of curcumin in breast cancer based on RNA sequencing and bioinformatics analysis. Breast Cancer. 2018;25:206-212.  [PubMed]  [DOI]
4.  邵 娟. 姜黄素调节miR-133a-3p靶向MMP15干预胃癌增殖、转移的作用及机制研究. 扬州大学. 2017;.  [PubMed]  [DOI]
5.  Liang HW, Yang X, Wen DY, Gao L, Zhang XY, Ye ZH, Luo J, Li ZY, He Y, Pang YY, Chen G. Utility of miR133a3p as a diagnostic indicator for hepatocellular carcinoma: An investigation combined with GEO, TCGA, metaanalysis and bioinformatics. Mol Med Rep. 2018;17:1469-1484.  [PubMed]  [DOI]
6.  Kim HJ, Park SY, Park OJ, Kim YM. Curcumin suppresses migration and proliferation of Hep3B hepatocarcinoma cells through inhibition of the Wnt signaling pathway. Mol Med Rep. 2013;8:282-286.  [PubMed]  [DOI]
7.  Warzyszyńska K, Jonas M, Wasiak D, Kosieradzki M, Małkowski P. Accelerated hepatocellular carcinoma recurrence rate after postoperative direct-acting antivirals treatment - preliminary report. Clin Exp Hepatol. 2017;3:194-197.  [PubMed]  [DOI]
8.  Zhou YM, Zhang XF, Li B, Sui CJ, Yang JM. Postoperative complications affect early recurrence of hepatocellular carcinoma after curative resection. BMC Cancer. 2015;15:689.  [PubMed]  [DOI]
9.  Yang J, Wang C, Zhang Z, Chen X, Jia Y, Wang B, Kong T. Curcumin inhibits the survival and metastasis of prostate cancer cells via the Notch-1 signaling pathway. APMIS. 2017;125:134-140.  [PubMed]  [DOI]
10.  Cao L, Xiao X, Lei J, Duan W, Ma Q, Li W. Curcumin inhibits hypoxia-induced epithelialmesenchymal transition in pancreatic cancer cells via suppression of the hedgehog signaling pathway. Oncol Rep. 2016;35:3728-3734.  [PubMed]  [DOI]
11.  Tong W, Wang Q, Sun D, Suo J. Curcumin suppresses colon cancer cell invasion via AMPK-induced inhibition of NF-κB, uPA activator and MMP9. Oncol Lett. 2016;12:4139-4146.  [PubMed]  [DOI]
12.  Zhang HH, Zhang Y, Cheng YN, Gong FL, Cao ZQ, Yu LG, Guo XL. Metformin incombination with curcumin inhibits the growth, metastasis, and angiogenesis of hepatocellular carcinoma in vitro and in vivo. Mol Carcinog. 2018;57:44-56.  [PubMed]  [DOI]
13.  邱 伟, 刘 阳, 曹 卫, 徐 军. 姜黄素抑制肝癌细胞系 HepG2的增殖、侵袭及其机制. 现代肿瘤医学. 2015;23:3221-3225.  [PubMed]  [DOI]
14.  Wu HJ, Zhuo Y, Zhou YC, Wang XW, Wang YP, Si CY, Wang XH. miR-29a promotes hepatitis B virus replication and expression by targeting SMARCE1 in hepatoma carcinoma. World J Gastroenterol. 2017;23:4569-4578.  [PubMed]  [DOI]
15.  Wang X, Liao Z, Bai Z, He Y, Duan J, Wei L. MiR-93-5p Promotes Cell Proliferation through Down-Regulating PPARGC1A in Hepatocellular Carcinoma Cells by Bioinformatics Analysis and Experimental Verification. Genes (Basel. ). 2018;9.  [PubMed]  [DOI]
16.  周 艳华, 茅 慧, 张 鹏飞, 戴 广海. miR-451对肝癌细胞增殖、糖酵解及相关基因表达的影响. 现代中西医结合杂志. 2018;27:934-937.  [PubMed]  [DOI]
17.  He RQ, Wu PR, Xiang XL, Yang X, Liang HW, Qiu XH, Yang LH, Peng ZG, Chen G. Downregulated miR-23b-3p expression acts as a predictor of hepatocellular carcinoma progression: A study based on public data and RT-qPCR verification. Int J Mol Med. 2018;41:2813-2831.  [PubMed]  [DOI]
18.  Li X, Song H, Liu Z, Bi Y. miR-1260b promotes cell migration and invasion of hepatocellular carcinoma by targeting the regulator of G-protein signaling 22. Biotechnol Lett. 2018;40:57-62.  [PubMed]  [DOI]
19.  Sui Y, Zhang X, Yang H, Wei W, Wang M. MicroRNA-133a acts as a tumour suppressor in breast cancer through targeting LASP1. Oncol Rep. 2018;39:473-482.  [PubMed]  [DOI]
20.  Qiu T, Zhou X, Wang J, Du Y, Xu J, Huang Z, Zhu W, Shu Y, Liu P. MiR-145, miR-133a and miR-133b inhibit proliferation, migration, invasion and cell cycle progression via targeting transcription factor Sp1 in gastric cancer. FEBS Lett. 2014;588:1168-1177.  [PubMed]  [DOI]
21.  Wang Y, Li J, Chen H, Mo Y, Ye H, Luo Y, Guo K, Mai Z, Zhang Y, Chen B, Zhou Y, Yang Z. Down-regulation of miR-133a as a poor prognosticator in non-small cell lung cancer. Gene. 2016;591:333-337.  [PubMed]  [DOI]
22.  Zhang W, Liu K, Liu S, Ji B, Wang Y, Liu Y. MicroRNA-133a functions as a tumor suppressor by targeting IGF-1R in hepatocellular carcinoma. Tumour Biol. 2015;36:9779-9788.  [PubMed]  [DOI]
23.  Cao MT, Liu HF, Liu ZG, Xiao P, Chen JJ, Tan Y, Jiang XX, Jiang ZC, Qiu Y, Huang HJ, Zhang QG, Jiang GM. Curcumin downregulates the expression of Snail via suppressing Smad2 pathway to inhibit TGF-β1-induced epithelial-mesenchymal transitions in hepatoma cells. Oncotarget. 2017;8:108498-108508.  [PubMed]  [DOI]