研究快报 Open Access
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世界华人消化杂志. 2013-09-08; 21(25): 2563-2570
在线出版日期: 2013-09-08. doi: 10.11569/wcjd.v21.i25.2563
艾灸对Helicobacter pylori胃炎大鼠单核细胞NF-κB、IκBα含量的影响
林亚平, 封迎帅, 易受乡, 彭艳, 史冬梅, 侯艳玲
林亚平, 易受乡, 彭艳, 史冬梅, 侯艳玲, 湖南中医药大学针灸推拿学院经穴脏腑相关重点研究室 针灸生物信息分析重点实验室 湖南省长沙市 410007
封迎帅, 湖南省人民医院康复理疗科针灸室 湖南省长沙市410005
林亚平, 主要从事针灸治病机制的研究.
基金项目: 国家自然科学基金资助项目, No. 81072867.
作者贡献分布: 此课题由林亚平、易受乡及彭艳设计; 研究过程由林亚平、封迎帅、彭艳、史冬梅及侯艳玲操作完成; 研究所用工具由林亚平提供; 数据分析由封迎帅、易受乡及林亚平完成; 本论文写作由封迎帅完成.
通讯作者: 林亚平, 教授, 博士生导师, 410007, 湖南长沙市韶山中路113号, 湖南中医药大学针灸推拿学院. lyp5381161@126.com
电话: 0731-85381161
收稿日期: 2012-03-17
修回日期: 2013-04-10
接受日期: 2013-08-13
在线出版日期: 2013-09-08

目的: 探讨艾灸对幽门螺杆菌(Helicobacter pylori, H. pylori)胃炎大鼠胃黏膜HE染色镜检胃黏膜炎症积分值和单核细胞核因子-κB(nuclear factor-κB, NF-κB)、IκBα含量的影响, 初步揭示艾灸干预H. pylori胃黏膜炎性损伤, 保护胃黏膜的机制.

方法: 50只健康大鼠随机分为5组, 即A空白组、B模型组、C艾灸组、D艾灸非穴点组和E电针组, 每组10只. 采用H. pylori灌胃造模, 蛋白免疫印记法检测大鼠外周血单核细胞NF-κB、IκBα的含量.

结果: 与A组比较, B组大鼠胃黏膜HE染色镜检胃黏膜炎症积分值和单核细胞NF-κB含量显著升高(0±2.0 vs 2.5±2.5, 0.54±0.11/β-actin vs 0.36 ±0.13/β-actin, P<0.01), IκBα含量显著降低(0.21±0.03/β-actin vs 0.65±0.18/β-actin, P<0.01); 与B组比较, C组大鼠胃黏膜HE染色镜检胃黏膜炎症积分值和单核细胞NF-κB含量显著减低(2.5±2.5 vs 0±2.00, 0.36±0.13/β-actin vs 0.50±0.04/β-actin, P<0.01), IκBα含量显著升高(0.65±0.18/β-actin vs 0.24±0.06/β-actin, P<0.01); 与D组相比, C组大鼠胃黏膜HE染色镜检胃黏膜炎症积分值和单核细胞NF-κB含量明显升高(3.00±2.5 vs 0±2.00, 0.36±0.12/β-actin vs 0.50±0.04/β-actin, P<0.01), IκBα含量显著降低(0.64±0.19/β-actin vs 0.24±0.06/β-actin, P<0.01); 与E组相比, C组大鼠胃黏膜HE染色镜检胃黏膜炎症积分值和单核细胞NF-κB含量明显升高(3±2.75 vs 0±2.00, 0.35±0.10/β-actin vs 0.50±0.04/β-actin, P<0.01), IκBα含量显著降低(0.52±0.17/β-actin vs 0.24±0.06/β-actin, P<0.01).

结论: 艾灸穴位可减轻H. pylori胃炎胃黏膜炎性损伤, 此作用可能与艾灸诱导单核细胞IκBα大量表达, 抑制NF-κB表达, 减少炎性细胞因子的释放, 减轻胃黏膜炎症损伤有关.

关键词: 艾灸; 幽门螺旋杆菌相关性胃炎; 胃黏膜组织HE染色镜检炎症程度评分积分值; 核因子κB; IκBα

核心提示: 本研究从细胞核因子κB(nuclear factor-κB, NF-κB)入手探讨艾灸穴位是否能干预幽门螺杆菌(Helicobacter pylori, H. pylori)所致胃黏膜炎性损伤, 是否通过调节NF-κB、IκBα的释放来抑制胃黏膜局部炎性细胞的浸润, 减轻胃黏膜炎性损伤, 从而为艾灸防治H. pylori胃炎提供理论依据.


引文著录: 林亚平, 封迎帅, 易受乡, 彭艳, 史冬梅, 侯艳玲. 艾灸对Helicobacter pylori胃炎大鼠单核细胞NF-κB、IκBα含量的影响. 世界华人消化杂志 2013; 21(25): 2563-2570
Effect of moxibustion treatment on expression of NF-κB and IκBα in peripheral blood monocytes of rats with Helicobacter pylori-associated gastritis
Ya-Ping Lin, Ying-Shuai Feng, Shou-Xiang Yi, Yan Peng, Dong-Mei Shi, Yan-Ling Hou
Ya-Ping Lin, Shou-Xiang Yi, Yan Peng, Dong-Mei Shi, Yan-Ling Hou, Key Laboratory of Correlation between Points on Meridian and Viscera & Key Laboratory of Acupuncture Biological Information Analysis, College of Acupuncture and Massage, Hunan University of Traditional Chinese Medicine, Changsha 410007, Hunan Province, China
Ying-Shuai Feng, Department of Rehabilitation and Physiotherapy, the People's Hospital of Hunan Province, Changsha 410007, Hunan Province, China
Supported by: National Natural Science Foundation of China, No. 81072867.
Correspondence to: Ya-Ping Lin, Professor, College of Acupuncture and Massage, Hunan University of Traditional Chinese Medicine, 113 Shaoshan Middle Road, Changsha 410007, Hunan Province, China. lyp5381161@126.com
Received: March 17, 2012
Revised: April 10, 2013
Accepted: August 13, 2013
Published online: September 8, 2013

AIM: To explore the effect of moxibustion treatment on gastric inflammatory injury and expression of NF-κB and IκBα in peripheral blood monocytes of rats with Helicobacter pylori (H. pylori)-associated gastritis, to reveal the mechanisms underlying the protective effect of moxibustion treatment against gastric inflammatory injury.

METHODS: Fifty healthy rats were randomly divided into five groups, namely, a control group (A), a H. pylori model group (B), a moxibustion at acupoints group (C), a moxibustion at non-acupoints group (D) and an electro-acupuncture group (E). Gastritis was induced by oral gavage with live H. pylori. The expression of NF-κB and IκBα in peripheral blood monocytes was detected by Western blot.

RESULTS: Compared to group A, gastric mucosal inflammation score and expression of NF-κB in monocytes were significantly increased (0 ± 2.0 vs 2.5 ± 2.5, 0.54 ± 0.11/β-actin vs 0.36 ± 0.13/β-actin, both P < 0.01), and expression of IκBα in monocytes was significantly decreased in group B (0.21 ± 0.03/β-actin vs 0.65 ± 0.18/β-actin, P < 0.01). Compared to group B, gastric mucosal inflammation score and expression of NF-κB in monocytes were significantly decreased (2.5 ± 2.5 vs 0 ± 2.00, 0.36 ± 0.13/β-actin vs 0.50 ± 0.04/β-actin, both P < 0.01), and expression of IκBα in monocytes was significantly increased in group C (0.65 ± 0.18/β-actin vs 0.24 ± 0.06/β-actin, P < 0.01). Compared to group D, gastric mucosal inflammation score and expression of NF-κB in monocytes were significantly decreased (3.00 ± 2.5 vs 0 ± 2.00, 0.36 ± 0.12/β-actin vs 0.50 ± 0.04/β-actin, both P < 0.01), and expression of IκBα in monocytes was significantly increased in group C (0.64 ± 0.19/β-actin vs 0.24 ± 0.06/β-actin, P < 0.01). Compared to group E, gastric mucosal inflammation score and expression of NF-κB in monocytes were significantly decreased (3 ± 2.75 vs 0 ± 2.00, 0.35 ± 0.10/β-actin vs 0.50 ± 0.04/β-actin, both P < 0.01), and expression of IκBα in monocytes was significantly increased in group C (0.52 ± 0.17/β-actin vs 0.24 ± 0.06/β-actin, P < 0.01).

CONCLUSION: Moxibustion at acupoints can reduce H. pylori-induced gastric mucosal inflammatory injury possibly via mechanisms associated with reducing NF-κB expression in monocytes and decreasing the release of inflammatory cytokines.

Key Words: Moxibustion; Helicobacter pylori gastritis; Extracellular heat shock protein 72; NF-κB; IκBα


0 引言

研究认为核因子κB(nuclear factor-κB, NF-κB)可参与炎症反应, 介导多种炎性细胞因子的生成[1-4], IκBα的降解和磷酸化是NF-κB活化的关键因素[5]. 幽门螺杆菌(Helicobacter pylori, H. pylori)感染是引起胃黏膜炎性损伤的主要病因[6], 本组前期研究发现艾灸穴位预处理能增强机体免疫功能[7], 减轻H. pylori胃炎大鼠的胃黏膜炎性损伤[8], 但是艾灸是否可以通过调节NF-κB、IκBα的释放来干预H. pylori胃炎的炎性损伤过程还不明确. 因此, 本研究采用H. pylori灌胃建立大鼠H.pylori胃炎模型, 观察艾灸对H. pylori胃炎大鼠NF-κB、IκBα的影响, 初步探讨灸干预H. pylori胃黏膜炎性损伤的作用机制.

1 材料和方法
1.1 材料

健康SD大鼠, SPF级, 雌雄各半, 体质量180-220 g, 共50只, 由湖南中医药大学实验动物中心提供(合格证号SCXK(湘)2009-2004), 饲养于湖南中医药大学实验动物中心. 控制室温20 ℃-22 ℃, 相对湿度65%-70%, 大鼠在自然光暗周期的环境中饲养, 所用颗粒饲料和垫料均由湖南中医药大学动物实验中心提供. 施灸材料为苏州东方艾绒厂生产的"神灸300灸"艾炷(型号: 东方一型), 直径0.5 cm, 高0.8 cm. H. pylori菌株(由南华大学微生物实验室提供H. pylori国际标准菌株SS1菌种, 湖南中医药大学微生物实验室培养H. pylori菌株); 小牛血清(上海瑞齐生物科技有限公司), H. pylori快速尿素酶试验试剂盒(三明市安信生物技术有限公司), 10%乌拉坦、0.9%NaCl和多聚甲醛(湖南中医药大学针灸推拿实验室配制); 阿莫西林(华北制药); 华佗牌针灸针由苏州医疗用品厂有限公司生产, G6805-2型电针治疗仪(上海医用机器厂); AUE-210电子分析天平(长沙湘仪天平仪器厂); DK-8B电热恒温水槽(上海精宏实验设备有限公司); ZLSC-5型不锈钢电热重蒸馏水器(上海申安医疗器械厂); DHG-9246A型电热恒温鼓风干燥箱(上海精宏实验设备有限公司); 石蜡切片机(美国820型AO切片机); 低温离心机(上海安亭科学医学仪器厂); MDF-U32V超低温冰箱(日本三洋); BCD-216/226STC海尔冰箱(海尔公司); 淋巴细胞的分离(天津市灏洋生物制品科技有限责任公司); NF-κB抗体(EPI 1546-1)、IκBα抗体(EPI 1130-s)、β-actin(Santa Sc-1616r).

1.2 方法

1.2.1 动物分组: 所有大鼠按随机数字表法分为5组: A: 空白组, B: H. pylori胃炎模型(模型组), C: 模型+艾灸穴位组(艾灸组), D: 模型+艾灸非穴点组(艾灸对照点组), E: 模型+电针穴位组(电针组), 每组10只.

1.2.2 穴位定位: 动物穴位定位参考李忠仁主编《实验针灸学》常用动物穴位定位法及拟人对照法定位[9]. 足三里: 膝关节后外侧, 腓骨小头下约5 mm处; 中脘: 脐与胸骨剑突连线中点; 关元: 脐与趾骨联合上缘连线上3/5与下2/5交点, 约脐下25 mm处; 脾俞: 第十二胸椎棘突下, 旁开5 mm; 胃俞: 第十三胸椎棘突下, 旁开5 mm; 足三里的对照点: 在足阳明经和足太阳经之间, 平足三里; 中脘、关元的对照点: 分别在平中脘、关元穴的左侧腰部; 脾俞、胃俞的对照点: 在腋后线和肩胛下角的中线上, 分别平胸12、胸13.

1.2.3 动物造模方法: (1)H. pylori胃炎造模: 大鼠禁食12 h, 先以NaHCO3+消炎痛溶液0.5 mL/只灌胃, 禁食6 h后再以H. pylori(含量109/mL)1.5 mL/只灌胃, 隔天1次, 连续5次, 灌胃完毕后, 禁食禁水4 h, 之后正常喂养; (2)造模成功指标: 尿素酶试验阳性, 胃黏膜涂片革兰染色发现H. pylori, 胃黏膜组织HE染色镜检显示有炎性损伤即胃黏膜上皮细胞脱落并有炎性细胞浸润.

1.2.4 艾灸、电针方法: (1)艾灸方法: 取大鼠双侧足三里、中脘、关元、双侧脾俞和双侧胃俞穴及这些穴位的对照点(非穴点). 局部剪毛, 艾炷粘于穴位或非穴对照点上点燃施灸. 单日大鼠仰卧位固定, C组灸足三里、中脘和关元穴, D组灸足三里、中脘和关元穴的对照点; 双日大鼠俯卧位固定, C组灸脾俞和胃俞, D组灸脾俞和胃俞的对照点. 采用苏州东方艾绒厂提供的"神灸300灸"艾柱进行施灸, 每个艾灸部位连续艾灸5壮, 总延时约20 min左右, 每日1次, 连续16 d; (2)电针方法: 取大鼠双侧足三里、中脘、关元、双侧脾俞和双侧胃俞穴后穴位局部剪毛、络合碘消毒, 采用1寸、30号的华佗牌针灸针分别进行针刺, 针刺深度约4 mm左右, 针刺后连电针, 其中两侧足三里穴接在G6805-2型电针仪的第一组输出线上, 中脘和关元、两侧脾俞、两侧胃俞分别接在电针仪的第二、三、四组输出线上. 单日大鼠仰卧位固定, E组电针足三里、中脘和关元穴; 双日大鼠俯卧位固定, E组电针脾俞和胃俞. 一只大鼠每次共接两组输出线, 采用疏密波, 频率4-50 Hz, 脉宽0.5 ms, 输出电压2-4 V, 强度以肢体出现轻微颤抖为度, 电针时间20 min, 1次/d, 连续16 d.

1.2.5 实验步骤: 所有动物分组后予以浓度为2.5 g/L的阿莫西林生理盐水溶液0.5 mL/只灌胃, 2次/d, 连续3 d(杀灭大鼠上消化道可能定植的H. pylori; 第4天起每天13点所有大鼠捆缚于鼠板上, A、B组每日仅捆绑不做治疗, C、D组予以艾灸治疗, E组予以电针治疗, 1次/d, 连续16 d; 同时, 从实验第11天(即艾灸的第8天)开始灌胃, 隔天1次, 连续5次(即9 d), 灌胃前所有的大鼠禁食12 h, 上午10点左右A组先予以生理盐水0.5 mL/只灌胃, B、C、D、E组予以NaHCO3+消炎痛溶液0.5 mL/只灌胃; 再禁食不禁水6 h后, 在下午16:30开始进行第2次灌胃, A组予以生理盐水1.5 mL/只灌胃, B、C、D、E组予以H. pylori(1×109)1.5 mL/只灌胃, 灌胃完毕后, 禁食禁水4 h, 之后正常喂养; 于最后一次灌胃(艾灸)结束后的第4周(28 d), 禁食12 h后全部大鼠以10%乌拉坦(1 mL/100 g)麻醉固定取材. 胃黏膜处理: 大鼠剖腹取胃, 沿胃大弯剖开, 用冷生理盐水冲洗胃内残留物, 计数胃黏膜损伤指数. 血清处理: 腹主动脉采血, 常温放置2-3 h, 4 ℃ 2000 r/min, 离心10 min, 取上清液, EP管分装, -20 ℃保存, 待测.

1.2.6 观察指标: (1)胃黏膜组织HE染色镜检炎症程度评分积分值, 根据参考文献[10-13], 从下面3个方面对胃组织炎症损伤进行评分: (1)炎性细胞浸润: 无(0分), 炎症细胞较少(1分), 数量较多(2分), 炎症细胞密集(3分); (2)浸润深度: 局限于黏膜浅层不超过黏膜层的1/3(1分), 炎症细胞浸入黏膜下层黏膜全层的2/3(2分), 浸入黏膜全层或肌层(3分); (3)破损程度: 无(0分), 上皮(1分), 黏膜固有层(2分), 黏膜肌层(3分). 将上述分值相加作为炎性损伤总分值进行组间比较. 胃黏膜组织HE染色镜检按下面步骤进行HE染色: 组织入4%多聚甲醛固定24 h以上; 梯度乙醇脱水: 750 mL/L乙醇(ALC)2-4 h, 80%ALC 2-4 h, 95%ALC 3-4 h, 无水乙醇4 h, 二甲苯透明4 h; 包埋、自然冷却后修整蜡块置低温保存备用; 切片: 切片厚4-5 μm, 铺片, 60 ℃温箱中烤片; 染色: 切片脱蜡, 二甲苯2次各10 min, 无水乙醇3-5 min, 950 mL/L乙醇3-5 min, 800 mL/L乙醇5-10 min, 自来水洗约5 min, 苏木素液染色约5-10 min, 自来水洗去多余染液, 入750 mL/L乙醇(100 mL乙醇中加浓盐酸1 mL)分色数秒钟立即水洗并蓝化; 1%伊红水液染色3-5 min水洗; 入750-800 mL/L乙醇分色2-4 min, 950 mL/L乙醇脱水3-5 min, 无水乙醇脱水3-5 min; 二甲苯透明中性树胶封片; 干后镜下观察并显微采图; (2)外周血单核细胞NF-κB、IκBα含量测定: 按照EPI公司的大鼠外周血单核细胞NF-κB、IκBα的测定检测试剂盒的要求, 采用蛋白免疫印记检测, 具体步骤如下: 蛋白提取: 在每106单核细胞中加250 μL细胞总蛋白提取试剂(使用前数分钟内加入cooktail、PMSF和磷酸化蛋白酶抑制剂), 振荡. 如果需要提高蛋白浓度, 可以适当减少细胞总蛋白提取试剂体积; 将加有蛋白提取试剂的细胞放在冰上孵育30 min. 其间每5 min用200 μL移液器反复吹打. 直至悬液清澈、不黏稠; 1200 r/min离心10 min, 上清即为提取的总蛋白. 蛋白浓度测定: 采用Bradford方法测定; 标准曲线制作; 10 mg/mL BSA用生理盐水稀释为1 mg/mL; 样品浓度测定; 900 μL Bradford加入1 μL待测蛋白和99 μL 0.9%生理盐水, 混匀后在595 nm处检测吸光度. 根据标准品做出的标准曲线上计算出各样本蛋白浓度; 测完蛋白含量后, 计算含40 μg蛋白的溶液体积即为上样量; 在蛋白标本中加入适当体积的蛋白上样缓冲液, 沸水浴5 min; SDS-PAGE电泳: 清洗玻璃板; 灌胶与上样: 将玻璃板对齐后放入夹中卡紧, 操作时要使两玻璃对齐, 以免漏胶; 按实验安排配制分离胶, 加入TEMED后立即摇匀即可灌胶. 大约45 min后可倒去胶上层水并用吸水纸将剩余水吸干; 按前面方法配5%的浓缩胶, 加入TEMED后立即摇匀即可灌胶. 将剩余空间灌满浓缩胶然后将梳子插入浓缩胶中; 加足够的电泳液后上样电泳: 将样品加入电泳孔中, 电泳; 浓缩胶电压75 V, 分离胶用120 V; 电泳至溴酚蓝刚跑出即可终止电泳, 进行转膜; 转膜: 准备6张7 cm×9 cm的滤纸和一张大小适中的0.45 μm PVDF膜, PVDF膜在使用之前要先用甲醇活化; 在加有转移液的盆里放入转膜用的夹子, 两块海绵垫, 一支玻棒, 滤纸和经过活化的PVDF膜; 将夹子打开使黑的一面保持水平; 在垫子上垫海绵、三层滤纸; 小心剥下分离胶盖于滤纸上, 将膜盖于胶上, 并除气泡; 在膜上盖三张滤纸并除去气泡, 最后盖上另一个海绵垫; 转膜条件: 200 mA, 1 h; 免疫反应: 将转好的膜于室温下脱色摇床上用5%的脱脂牛奶(0.5%TBST配), 封闭1 h; 稀释一抗(TBST溶解的5%脱脂牛奶), 4℃过夜; 用TBST在室温下脱色摇床上洗3次, 每次5 min; 将二抗用TBST稀释3000倍, 室温下孵育30 min后, 用TBST在室温下脱色摇床上洗3次, 每次5 min; 化学发光: 将A和B两种试剂在离心管中等体积混合, 将膜蛋白面朝上与此混合液充分接触, 1-2 min后, 去尽残液, 包好, 放入X-光片夹中曝光; 根据不同的光强度调整曝光条件, 显影、定影; 凝胶图像分析: 将胶片进行扫描存档, Alpha软件处理系统分析目标带的灰度值, 以目的蛋白的灰度值除以内参β-actin的灰度值以校正上样误差, 最后与对照组比较, 测定其相对光密度值即蛋白表达差异倍数(单位为/β-actin), 其中光密度值高说明表达多, 光密度值低说明表达少.

统计学处理 所有资料进行正态性检验, 符合正态分布的数据用mean±SD表示, 多组计量资料采用单因素方差分析(One-way ANOVA), 方差齐者用LSD法, 方差不齐者用Tamhane's T2法; 非正态分布数据用中位数与四分位数间距[M(Q)]表示, 采用秩和检验. 所有数据使用SPSS19 for Windows软件进行处理, P<0.05为差异有统计学意义.

2 结果
2.1 胃黏膜涂片革兰氏染色检查

空白组胃黏膜革兰染色后镜检没有发现有红色的弧形或H. pylori; 模型组胃黏膜染色后镜检可见大量红色的弧形或H. pylori(图1), 说明H. pylori灌胃后大鼠感染了H. pylori.

图1
图1 空白组和模型组大鼠胃黏膜涂片革兰氏染色镜检结果. A: 空白组; B: 模型组.
2.2 艾灸对各组大鼠HE染色镜检胃组织形态学变化的影响

与A组比较, B、D、E组大鼠胃黏膜上皮明显破损、脱落, 固有层中腺体浅层被破坏, 有少数炎症细胞浸润, 胃黏膜上皮损伤明显; 与B、D、E组比较, C组大鼠胃黏膜破损、脱落较轻, 炎症细胞浸润较少, 说明艾灸预处理对胃黏膜损伤的炎性浸润有抑制作用, 能促进胃黏膜的修复(图2).

图2
图2 各组胃组织HE染色后镜检形态学比较(×250). A: 空白组; B: 模型组; C: 艾灸组; D: 艾灸对照点组; E: 电针组.
2.3 艾灸对H. pylori胃炎大鼠胃黏膜组织HE染色镜检炎症程度评分积分值影响

与A组比较, B组大鼠胃黏膜组织HE染色镜检炎症程度评分积分值升高(P<0.01); 与B组相比, C组大鼠胃黏膜组织HE染色镜检炎症程度评分积分值降低(P<0.01), D、E组大鼠胃黏膜组织HE染色镜检炎症程度评分积分值无明显降低(P>0.05); 与D、E组相比, C组大鼠胃黏膜组织HE染色镜检炎症程度评分积分值明显降低(P<0.01), 以上结果提示: H. pylori灌胃造模后, 胃黏膜受损; 艾灸预处理可降低胃黏膜组织HE染色镜检炎症程度评分积分值, 减轻胃黏膜炎性损伤, 且减轻胃黏膜炎性损伤作用优于艾灸非穴位与电针组(表1).

表1 艾灸对H. pylori胃炎大鼠胃黏膜炎症程度评分积分值影响 [n = 10, M(Q)].
分组胃黏膜炎症程度评分积分值
空白组0(0)
模型组3(2.5)b
艾灸组0(0)dfh
艾灸对照点组3(2.5)
电针组2.5(2.0)
2.4 艾灸对H. pylori胃炎大鼠外周血单核细胞IκBα、NF-κB表达的影响

与A组比较, B组大鼠单核细胞IκBα含量降低(P<0.05); 与B组比较, C组大鼠单核细胞IκBα含量增加(P<0.05), D、E组大鼠单核细胞IκBα含量无明显增加(P>0.05); 与D、E组比较, C组大鼠单核细胞IκBα表达增加(P<0.05), 以上提示: H. pylori灌胃造模后, 大鼠单核细胞IκBα表达量显著下降, 艾灸穴位组可以使H. pylori胃炎大鼠单核细胞IκBα表达增加, 而电针穴位和艾灸对照点组不能增加H. pylori胃炎大鼠单核细胞IκBα含量, 艾灸穴位组增加大鼠单核细胞IκBα表达效果优于电针和艾灸非对照点组的效果(表2, 图3). 与A组比较, B组大鼠单核细胞NF-κB表达量增强(P<0.01); 与B组比较, C组大鼠单核细胞NF-κB表达量下降(P<0.01), D、E组大鼠单核细胞NF-κB表达量无明显下降(P>0.05); 与D、E组比较, C组大鼠单核细胞NF-κB表达降低(P<0.01), 提示: H. pylori灌胃造模后, 大鼠单核细胞NF-κB表达量显著上升, 艾灸穴位组可以使H. pylori胃炎大鼠单核细胞NF-κB表达降低, 而电针穴位和艾灸对照点预处理不能降低H. pylori胃炎大鼠单核细胞NF-κB表达, 艾灸穴位组降低大鼠单核细胞NF-κB表达效果优于电针和艾灸非对照点组的效果(表2, 图3).

表2 艾灸对H. pylori胃炎大鼠单核细胞IκBα、NF-κB相对光密度值的影响 (n = 5, mean±SD).
分组IκBα(相对光密度度值)(/β-actin)NF-κB(相对光密度度值)(/β-actin)
空白组0.54±0.110.21±0.03
模型组0.36±0.13a0.65±0.18b
艾灸组0.50±0.04ceg0.24±0.06dfh
艾灸对照点组0.36±0.120.64±0.19
电针组0.35±0.100.52±0.17
图3
图3 各组大鼠单核细胞NF-κB相对光密度值比较. A: 空白组; B: 模型组; C: 艾灸组; D: 艾灸对照点组; E: 电针组.
3 讨论

慢性胃炎属于祖国医学"胃脘痛"范围, 临床上约70%-80%的患者可无任何症状, 有症状者主要表现为上腹不适、饱胀、钝痛、烧灼痛等非特异性的消化不良症状[6]. H. pylori感染是导致胃炎的主要原因, H. pylori感染活动期胃黏膜固有层、小凹上皮和腺上皮之间可出现中性粒细胞浸润, 炎症的静息期则以淋巴细胞和浆细胞慢性炎症浸润为主. 目前关于H. pylori相关性慢性胃炎的诊断主要是组织学、尿素酶、细菌培养、14C-尿素呼气试验任一项阳性证实有H. pylori现症感染, 病理切片检查有慢性胃炎的组织学改变[14].

NF-κB命名是因为他是作为B细胞细胞核转录因子被发现, 免疫球蛋白κ轻链基因是他的结合位点, 他是以p50/p65异二聚体形式存在于哺乳动物细胞浆中的转录因子, 在静息状态下, 与抑制性蛋白IκB结合在一起, 以无活性的形式存在于细胞质中. 当他被细菌、病毒、LPS、氧化剂和自由基等刺激后[15-17], IκB被磷酸化和降解, 使NF-κB与IκB解离, 游离的NF-κB转入细胞核内, 启动基因转录[18], 诱导细胞因子的转录. NF-κB被认为是最重要的炎症调节信号通路之一[19,20]. 抑制蛋白IκB主要由IκBα、IκBβ和IκBε 3种分子组成的蛋白家族, 其中IκBα是NF-κB激活途径中主要的调节分子, IκB与NF-κB结合可以阻止细胞质中的NF-κB进入细胞核和调控其转录功能, 抑制NF-κB活化[21]. NF-κB信号通路[22]参与了感染、炎症、免疫反应和细胞凋亡等病理过程[23-25], IκBα的降解和磷酸化是NF-κB活化的最关键因素. 因此, 研究证明可以通过阻止IκBα降解来抑制NF-κB的活化, 从而阻断NF-κB炎性信号转导途径, 缓解组织炎性损伤[19,20].

总之, H. pylori灌胃造模后, 大鼠胃黏膜HE染色镜检胃黏膜炎症积分值和单核细胞NF-κB含量显著升高, IκBα含量显著降低; 艾灸穴位处理后大鼠胃黏膜HE染色镜检胃黏膜炎症积分值和单核细胞NF-κB含量显著降低, IκBα含量显著增加; 电针穴位和艾灸对照点处理后大鼠胃黏膜HE染色镜检胃黏膜炎症积分值和单核细胞NF-κB无明显降低, IκBα含量无明显增加; 提示:H. pylori直接灌胃后, 大鼠胃黏膜明显受损; 电针穴位和艾灸对照点处理不能减轻对H. pylori胃炎的炎性损伤; 艾灸穴位可减轻H. pylori胃炎胃黏膜炎性损伤, 此作用可能与艾灸诱导单核细胞IκBα大量表达, 抑制NF-κB表达, 减少炎性细胞因子的释放, 干预胃黏膜局部炎性细胞的浸润, 减轻胃黏膜炎症损伤有关.

评论
背景资料

本组以往从艾灸对胃黏膜保护作用进行了系统研究, 发现艾灸足三里等穴能诱导eHSP72表达, 增强机体免疫功能, 干预胃黏膜炎性损伤过程; 但是艾灸对幽门螺杆菌(Helicobacter pylori, H. pylori)胃炎的干预作用, 是否与细胞核因子κB(nuclear factor-κB, NF-κB)、IκBα有关还有待进一步研究.

同行评议者

郑鹏远, 教授, 主任医师, 郑州大学第二附属医院消化科

研发前沿

艾灸、NF-κB与胃黏膜炎性损伤有密切关系, 研究报道艾灸穴位处理能增强机体免疫功能, 干预胃黏膜炎性损伤. 艾灸对H. pylori所致胃黏膜损伤的保护是否与NF-κB、IκBα有关, 艾灸是否能通过调节 NF-κB、IκBα的表达来干预胃黏膜局部炎性细胞的浸润, 是本研究的主要目的.

相关报道

研究发现艾灸对胃黏膜损伤有保护作用, 灸疗对机体的免疫作用是一切作用的基础, 目前从单核细胞NF-κB、IκBα方面来研究艾灸的免疫调节作用是近年研究的热点.

创新盘点

本研究结果显示艾灸足三里等穴可降低H. pylori胃炎大鼠胃黏膜HE染色镜检胃黏膜炎症积分值, 增高单核细胞IκBα含量, 降低NF-κB含量. 说明艾灸足三里等穴能通过调节单核细胞IκBα、NF-κB含量, 达到对胃黏膜的保护作用, 并有一定穴位特异性.

同行评价

本文设计合理, 实验方法科学, 结论中肯, 具有一定指导意义.

编辑: 田滢 电编: 鲁亚静

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