文献综述 Open Access
Copyright ©The Author(s) 2011. Published by Baishideng Publishing Group Inc. All rights reserved.
世界华人消化杂志. 2011-10-08; 19(28): 2942-2946
在线出版日期: 2011-10-08. doi: 10.11569/wcjd.v19.i28.2942
骨髓间充质干细胞治疗急性胰腺炎的潜能
赖薇, 邓明明
赖薇, 邓明明, 泸州医学院附属医院消化内科 四川省泸州市 646000
作者贡献分布: 本综述由赖薇完成; 邓明明审校.
通讯作者: 邓明明, 教授, 主任医师, 646000, 四川省泸州市, 泸州医学院附属医院消化内科. 793070544@qq.com
电话: 0830-3165331
收稿日期: 2011-07-31
修回日期: 2011-09-03
接受日期: 2011-10-01
在线出版日期: 2011-10-08

急性胰腺炎是多种病因导致的胰腺水肿、出血, 甚至坏死的炎症性疾病, 有较高的发病率及死亡率, 目前仍缺乏特异性的治疗方法. 而骨髓来源的间充质干细胞(marrow-derived mesenchymal stem cells, BMSCs)作为一种具有多向分化潜能的细胞, 可跨越中胚层向内、外胚层的其他组织细胞转化, 并具有再生、修复及抗炎的作用. 目前的研究已证明, BMSCs有治疗急性胰腺炎的潜能. 主要通过向损伤部位迁移并增殖, 转化为胰腺干细胞, 参与组织再生; 修复血管内皮, 改善血流; 调控炎症相关的细胞因子, 减轻炎症反应以及免疫调节功能来发挥其治疗作用, 为临床上急性胰腺炎的治疗提供了新的思路.

关键词: 骨髓来源; 间充质干细胞; 急性胰腺炎; 治疗

引文著录: 赖薇, 邓明明. 骨髓间充质干细胞治疗急性胰腺炎的潜能. 世界华人消化杂志 2011; 19(28): 2942-2946
Potential therapeutic effect of bone marrow-derived mesenchymal stem cells in acute pancreatitis
Wei Lai, Ming-Ming Deng
Wei Lai, Ming-Ming Deng, Department of Gastroenterology, the Affiliated Hospital of Luzhou Medical College, Luzhou 646000, Sichuan Province, China
Correspondence to: Ming-Ming Deng, Professor, Department of Gastroenterology, the Affiliated Hospital of Luzhou Medical College, Luzhou 646000, Sichuan Province, China. 793070544@qq.com
Received: July 31, 2011
Revised: September 3, 2011
Accepted: October 1, 2011
Published online: October 8, 2011

Acute pancreatitis is an inflammatory disease with dropsical, hemorrhagic or even necrotic conditions of the pancreas caused by several factors. It has significant morbidity and mortality, but no specific therapy is available so far. Bone marrow-derived mesenchymal stem cells (BMSCs) have multiple differentiation potential. They can not only differentiate to form endoderm and ectoblast cells, but also participate in tissue regeneration, repair and anti-inflammation. Recent studies have demonstrated that BMSCs have potential therapeutical effect in acute pancreatitis. BMSCs can migrate to injury tissue, multiply, be transformed to pancreatic stem cells and then participate in the process of regeneration. They also renovate vascular endothelium to improve blood circulation, adjust and control the cytokines to decrease inflammation, and regulate immunization. Here we review the recent advances in understanding the role of BMSCs in the treatment of acute pancreatitis.

Key Words: Bone marrow; Mesenchymal stem cells; Acute pancreatitis; Therapy


0 引言

急性胰腺炎(acute pancreatitis, AP)是由多种病因导致的胰腺组织水肿、出血甚至坏死的炎症反应. 可按严重程度分为轻型(mild acute pancreatitis, MAP)和重型(severe acute pancreatitis, SAP). 其发病机制尚不完全清楚, 目前公认的是腺泡细胞分泌的酶原物质被激活, 导致胰腺组织的自身消化[1-4]. 急性胰腺炎作为胰腺常见的炎性组织环境, 因为其显著的发病率和死亡率, 成为临床工作中未解决的难题[1,5]. 酒精和胆结石(包括微结石)是AP最常见的发病原因[1,5,6], 其他少见的原因包括: 药物、毒素、感染、外伤、组织缺血、解剖变异、代谢异常(高钙血症及高脂血症)、自身免疫性疾病等等. 时至今日, 仍然没有治疗AP的特效方法. 目前的治疗主要局限于一般的支持治疗, 如液体疗法及营养支持、抗炎治疗以及通过ERCP治疗胆石性胰腺炎[5,7,8]. 因此, 开发一种能有效减少AP发病率及死亡率的方法迫在眉睫.

1987年Friedenstein等[9]发现在塑料培养皿中培养的贴壁的骨髓单个细胞在一定条件下可分化为多种类型的细胞, 而且经过20-30个培养周期仍能保持其多向分化潜能. 由于骨髓中的这种多能细胞能够分化为多种中胚层来源的间质细胞, 故称之为间充质干细胞(mesenchymal stem cells, MSCs). 目前研究已证明, MSCs在体内体外均表现出较强的可塑性, 能分化出3个胚层来源的多种组织细胞[10-12]. 近来研究表明, 骨髓来源的间充质干细胞(bone marrow-derived mesenchymal stem cells, BMSCs)在许多以炎症为基础病变的疾病的治疗中, 都发挥了潜在的再生、修复及抗炎作用[13-15]. Cui等[16]及滕春燕等[17]通过移植或回输BMSCs治疗SAP模型或胰腺损伤模型, 结果均显示血清淀粉酶水平明显低于对照组, 病理检查结果显示治疗组胰腺损伤程度亦轻于对照组, 提示BMSCs有助于减轻AP的病情.

BMSCs因取材方便, 骨髓穿刺即可获得, 创伤小, 无伦理道德影响, 属于前体干细胞, 免疫原性小, 方便体外扩增及分离, 成为近来研究的热点. 本文主要讨论BMSCs在急性胰腺炎中起到的修复胰腺损伤、抑制炎症反应及免疫调节功能方面的作用.

1 BMSCs向损伤部位的迁移与增殖

BMSCs发挥治疗作用的关键是到达损伤的部位. 已有研究表明, 骨髓间充质干细胞可随血液循环到达全身其他器官组织[16,18,19], 参与生理更新和病理损伤修复. 更有叶海清等[20]、陆奕等[21]、王建祥等[22]及Jung等[23]的实验显示, 相比于其他组织, 被标记BMSCs多出现在被损伤的胰腺组织中. 在Jung[23]的实验中还发现, 重度胰腺炎的胰腺组织中比中度胰腺炎发现更多的BMSCs聚集. 此结果与早前Prockop[24]的研究一致, 即组织损伤可以促进骨髓干细胞的迁入, 可能因为损伤部位产生的细胞因子可引导干细胞到达该部位, 类似于白细胞的趋化移动. 赵航等[25]的实验证明, 急性坏死性胰腺炎(acute necrotizing pancreatitis, ANP)大鼠在12 h内骨髓BMSCs的克隆形成率显著高于对照组, 证明ANP时BMSCs的增殖能力增强.

2 BMSCs在病损部位转化为胰腺干细胞, 并修复血管内皮

胰腺组织有自我修复的能力, 提示胰腺中可能存在具有分裂及分化功能的细胞. Bonner-weir等[26]切除大鼠90%胰腺后, 残存的胰腺组织明显增殖, 形成新的胰岛和胰腺外分泌组织, 提示胰腺存在能分化成具有特异功能的细胞. Ishiwata等[27]在L-精氨酸诱导的胰腺炎的胰腺组织内检测到nestin阳性细胞, 而一般认为nestin、c-Kit、CK19和vimentin可能是胰腺成体干细胞的表面标志物[28,29], 故提示胰腺成体干细胞参与了胰腺的再生. 但是生理条件下, 胰腺干细胞数目少, 再生和分化能力差, 分离纯化较困难, 限制了其应用.

BMSCs有转化为胰腺干细胞参与受损胰腺组织修复的能力. Ianus等[30]通过将带有GFP基因的骨髓移植给雌鼠后发现, 骨髓可以掺入胰腺中, 并且分化为有功能的内分泌细胞, 而且排除该分化是由细胞融合引起, 提示骨髓有可能是胰腺干细胞的另一个居所[31]. 在江学良等[32,33]的2个实验中, BMSCs移植组均出现了CK19荧光染色阳性的细胞. CK19是胰腺干细胞的分子标志物之一, 有研究发现, CK19阳性细胞能转分化为具有内分泌功能和外分泌功能的细胞, 故CK19在胰腺导管上皮细胞中有明显的表达, 在胰岛细胞中CK19表达很少, 在腺泡细胞中CK19无表达[34]. 这表明BMSCs在病损的胰腺组织停留下来, 完成了"本地化", 成为胰腺干细胞, 参与胰腺组织的修复. 在坏死性胰腺炎大鼠的肠组织中也出现荧光标记阳性的细胞, 说明BMSCs是机体多种组织干细胞的共同前体细胞, 从而证明了骨髓是干细胞库之一.

已有研究结果表明, 间充质干细胞在适当的条件下可向包括内皮祖细胞在内的多细胞分化[35-40], 而内皮祖细胞可促进血管新生, 改善血流[41,42]. 在陈强等[43]的实验中, 将体外培养后, 用EGFP标记的BMSCs注射至动物胰腺损伤区与完好区交界处, 24 h后冰冻切片, 共聚焦显微镜观察, 组织片中未见荧光标记, 仅在片中出现一环状荧光图像, 经专家鉴定为小循环系统管腔组织. 由此可见间充质干细胞首先到达受损组织的循环系统血管内皮, 使小循环修复, 改善血运情况, 从而使受损组织得到供血供氧, 达到修复损伤的目的.

3 BMSCs对炎症反应的调控

在急性胰腺炎的病理学过程中, 炎症反应发挥了极其重要的作用. 在AP的发病过程中释放的促炎因子及抗炎因子的活动介导着疾病的临床表现[44], 故患者血浆中的许多种细胞因子的活动受到越来越多的关注. 主要的促炎因子有TNF-α、IL-1β和IL-6[45-47]. Ishibashi等[48]的实验说明发生SAP时TNF-α及IL-6的水平增加. Masamune等[49]曾报道抗促炎因子TNF-α、IL-1β及IL-6治疗对AP动物模型有保护作用. 与促炎因子相反, IL-4及IL-10是阻碍炎症发生的抗炎因子[50-52], 尽管此结论存在争议.

Zhang等[53]及Guo等[54]的报道提示, 人类齿龈来源的MSCs能使结肠炎及心肌梗塞患者体内的TNF-α、IL-1β、IL-6、IFN-γ及IL-17水平衰减; Lee SH等[55]在应用BMSCs移植治疗博来霉素引起的肺损伤时, 发现BMSCs能下调肺组织中促炎因子的水平. 另外, 研究证明BMSCs能够分泌高水平的IL-1受体拮抗剂[56], 而IL-1受体拮抗剂能直接阻断IL-1α的作用及抑制活化的巨噬细胞产生TNF-α、IL-1、IL-6等细胞因子. 在抗炎因子方面, 有报道称[57]BMSCs能够分泌IL-10; Semedo等[58]报道, MSCs可增强肾损伤患者血浆中IL-4及IL-10的水平; 李德泉等[59]的实验中, BMSCs治疗组较胰腺炎组各时间点的血清淀粉酶及TNF-α和IL-6明显降低, IL-10无明显下降. 在Jung KH等[23]的实验中, 对AP大鼠移植BMSCs能显著减少TNF-α, IL-1β, IL-6的表达, 增加抗炎因子IL-4或IL-10的产生. 间充质干细胞合成分泌抗炎因子可能与细胞内NF-κB活性改变, 促进相关基因表达有关. Kang等[60]在研究NF-κB与胚胎干细胞的关系时发现, 干细胞未分化时干细胞内NF-κB的表达和活性都相当低, 而当干细胞分化时NF-κB的表达和活性明显增加,但这一机制的具体细节目前仍然不清楚. 此外, MSCs还可以抑制NK细胞增殖, 减低其细胞毒性作用, 减少其细胞因子产生.

4 BMSCs的免疫调节功能

MSCs具有免疫调节作用, 这也是供体MSCs在受体中可以存活的原因之一[61], 他可以抑制过度活跃的免疫细胞的活性[62]. 有研究表明, MSCs能够产生抑制炎症相关性疾病的调节性T细胞[63-66], 且近来研究的焦点集中在MSCs调控许多炎症介质的能力上, 这些炎症介质可通过转录因子3+调节性T细胞来抑制免疫反应[64,67], 并且转录因子3+调节性T细胞也可以诱导嗜中性粒细胞及CD4+T细胞的凋亡[68,69](也有研究报道MSCs可以抑制中性粒细胞的凋亡[70]). 因此, 我们推测BMSCs是否有可能诱导转录因子3+调节性T细胞的表达及T细胞的凋亡, Jung等[23]的实验揭示了BMSCs能够引起调节性T细胞的产生, 并通过凋亡来抑制T细胞增殖, 从而减少胰腺组织中T细胞的渗入, 从某种程度上证实了我们的推测. 详细的机制还需要将来进一步的探讨.

5 结论

BMSCs在干预AP的病程中发挥着重要作用. 他参与了胰腺干细胞的转化, 血管内皮组织的修复, 炎症相关的细胞因子的调控, 以及免疫调节等过程, 充分显示了治疗急性胰腺炎的潜能. 未来研究的重点应集中在BMSCs标准化的分离、培养方法及其特征的研究上, 还包括AP发生过程中的内源性机制以及细胞的活化等方面. BMSCs是未来治疗AP极有吸引力的崭新途径, 在应用于临床前还需要深入地进行评估和实践.

评论
背景资料

急性胰腺炎是胰腺组织水肿、出血甚至坏死的炎症反应,目前缺乏特异性的治疗方法. 而骨髓来源的间充质干细胞作为一种具有多向分化潜能、修复及抗炎作用的细胞, 已证明有治疗急性胰腺炎的潜能.

同行评议者

单云峰, 副主任医师, 温州医学院附属第一医院肝胆外科

研发前沿

目前关于骨髓间充质干细胞对急性胰腺炎病程的干预作用成为研究的热点, 包括其迁移、转化、修复、调控炎症反应以及免疫调节功能. 骨髓间充质干细胞的分离、培养及其特征的研究是仍需努力的方向.

相关报道

Jung等的研究将重点放在骨髓间充质干细胞对炎症因子的调控及免疫调节方面, 提示骨髓间充质干细胞能显著减少促炎因子TNF-α, IL-1β, IL-6的表达, 增加抗炎因子IL-4或IL-10的产生, 并能产生调节性T细胞, 并抑制T细胞增殖, 减少组织中T细胞的渗入. 这是目前研究中比较新颖的内容.

创新盘点

本文创新性的总结了骨髓间充质干细胞干预急性胰腺炎病程转归的机制及途径, 其中免疫调节方面是近来研究的焦点.

同行评价

本文总结了近年来骨髓间充质干细胞治疗急性胰腺炎研究, 显示了其将来的治疗潜能, 选题新颖,条理清楚, 有较好的学术价值.

编辑:曹丽鸥 电编:闫晋利

1.  Pandol SJ, Saluja AK, Imrie CW, Banks PA. Acute pancreatitis: bench to the bedside. Gastroenterology. 2007;132:1127-1151.  [PubMed]  [DOI]
2.  Lerch MM, Saluja AK, Dawra R, Ramaraò P, Saluja M, Steer ML. Acute necrotizing pancreatitis in the opossum: earliest morphological changes involve acinar cells. Gastroenterology. 1992;103:205-213.  [PubMed]  [DOI]
3.  Schmid RM. Pathophysiology of acute pancreatitis. If you believe in mice--it's time for conditional gene targeting! Digestion. 2005;71:159-161.  [PubMed]  [DOI]
4.  Weber CK, Adler G. From acinar cell damage to systemic inflammatory response: current concepts in pancreatitis. Pancreatology. 2001;1:356-362.  [PubMed]  [DOI]
5.  Forsmark CE, Baillie J. AGA Institute technical review on acute pancreatitis. Gastroenterology. 2007;132:2022-2044.  [PubMed]  [DOI]
6.  Lerch MM, Weidenbach H, Hernandez CA, Preclik G, Adler G. Pancreatic outflow obstruction as the critical event for human gall stone induced pancreatitis. Gut. 1994;35:1501-1503.  [PubMed]  [DOI]
7.  Mayerle J, Hlouschek V, Lerch MM. Current management of acute pancreatitis. Nat Clin Pract Gastroenterol Hepatol. 2005;2:473-483.  [PubMed]  [DOI]
8.  AGA Institute medical position statement on acute pancreatitis. Gastroenterology. 2007;132:2019-2021.  [PubMed]  [DOI]
9.  Friedenstein AJ, Chailakhyan RK, Gerasimov UV. Bone marrow osteogenic stem cells: in vitro cultivation and transplantation in diffusion chambers. Cell Tissue Kinet. 1987;20:263-272.  [PubMed]  [DOI]
10.  Yoon YS, Wecker A, Heyd L, Park JS, Tkebuchava T, Kusano K, Hanley A, Scadova H, Qin G, Cha DH. Clonally expanded novel multipotent stem cells from human bone marrow regenerate myocardium after myocardial infarction. J Clin Invest. 2005;115:326-338.  [PubMed]  [DOI]
11.  Oshima Y, Watanabe N, Matsuda K, Takai S, Kawata M, Kubo T. Behavior of transplanted bone marrow-derived GFP mesenchymal cells in osteochondral defect as a simulation of autologous transplantation. J Histochem Cytochem. 2005;53:207-216.  [PubMed]  [DOI]
12.  孟 繁凯, 陈 玉芮, 李 光民, 陈 强, 范 洪学. 骨髓间充质干细胞在脑缺血模型大鼠脑组织中的迁徙、定居及组织修复作用. 中国生物制品杂志. 2007;20:890-892, 896.  [PubMed]  [DOI]
13.  Augello A, Tasso R, Negrini SM, Cancedda R, Pennesi G. Cell therapy using allogeneic bone marrow mesenchymal stem cells prevents tissue damage in collagen-induced arthritis. Arthritis Rheum. 2007;56:1175-1186.  [PubMed]  [DOI]
14.  Tögel F, Hu Z, Weiss K, Isaac J, Lange C, Westenfelder C. Administered mesenchymal stem cells protect against ischemic acute renal failure through differentiation-independent mechanisms. Am J Physiol Renal Physiol. 2005;289:F31-F42.  [PubMed]  [DOI]
15.  Gupta N, Su X, Popov B, Lee JW, Serikov V, Matthay MA. Intrapulmonary delivery of bone marrow-derived mesenchymal stem cells improves survival and attenuates endotoxin-induced acute lung injury in mice. J Immunol. 2007;179:1855-1863.  [PubMed]  [DOI]
16.  Cui HF, Bai ZL. Protective effects of transplanted and mobilized bone marrow stem cells on mice with severe acute pancreatitis. World J Gastroenterol. 2003;9:2274-2277.  [PubMed]  [DOI]
17.  滕 春燕, 于 庭, 于 艳辉, 曲 雅琴, 陈 玉芮, 金 春香. 骨髓间充质干细胞对胰腺损伤模型大鼠血清生化指标的影响. 中国生物制品学杂志. 2009;22:252-255.  [PubMed]  [DOI]
18.  Rojas M, Xu J, Woods CR, Mora AL, Spears W, Roman J, Brigham KL. Bone marrow-derived mesenchymal stem cells in repair of the injured lung. Am J Respir Cell Mol Biol. 2005;33:145-152.  [PubMed]  [DOI]
19.  Lévesque JP, Winkler IG, Larsen SR, Rasko JE. Mobilization of bone marrow-derived progenitors. Handb Exp Pharmacol. 2007;3-36.  [PubMed]  [DOI]
20.  叶 海青, 范 东燕, 刘 雅娟, 陈 强, 范 洪学. 胰腺源间充质干细胞对大鼠胰腺损伤的修复作用. 吉林大学学报(医学版). 2008;34:551-555.  [PubMed]  [DOI]
21.  陆 奕, 高 军, 吴 洪玉, 龚 燕芳, 赵 航, 李 兆申. 同种异体骨髓间充质干细胞在急性坏死性胰腺炎大鼠中的迁移和分化. 中华胰腺病杂志. 2011;11:40-42.  [PubMed]  [DOI]
22.  王 建祥, 王 平, 吴 海龙, 刘 峰, 周 锐. 骨髓间充质干细胞在大鼠重症胰腺炎中的作用. 中国生化药物杂志. 2010;31:381-384.  [PubMed]  [DOI]
23.  Jung KH, Song SU, Yi T, Jeon MS, Hong SW, Zheng HM, Lee HS, Choi MJ, Lee DH, Hong SS. Human bone marrow-derived clonal mesenchymal stem cells inhibit inflammation and reduce acute pancreatitis in rats. Gastroenterology. 2011;140:998-1008.  [PubMed]  [DOI]
24.  Prockop DJ. Marrow stromal cells as stem cells for nonhematopoietic tissues. Science. 1997;276:71-74.  [PubMed]  [DOI]
25.  赵 航, 许 国铭, 李 兆申, 高 军, 龚 燕芳, 吴 洪玉. 急性坏死性胰腺炎大鼠骨髓间充质干细胞增值能力的变化. 中华胰腺病杂志. 2009;9:167-169.  [PubMed]  [DOI]
26.  Bonner-Weir S, Taneja M, Weir GC, Tatarkiewicz K, Song KH, Sharma A, O'Neil JJ. In vitro cultivation of human islets from expanded ductal tissue. Proc Natl Acad Sci U S A. 2000;97:7999-8004.  [PubMed]  [DOI]
27.  Ishiwata T, Kudo M, Onda M, Fujii T, Teduka K, Suzuki T, Korc M, Naito Z. Defined localization of nestin-expressing cells in L-arginine-induced acute pancreatitis. Pancreas. 2006;32:360-368.  [PubMed]  [DOI]
28.  Peters K, Panienka R, Li J, Klöppel G, Wang R. Expression of stem cell markers and transcription factors during the remodeling of the rat pancreas after duct ligation. Virchows Arch. 2005;446:56-63.  [PubMed]  [DOI]
29.  Yalniz M, Pour PM. Are there any stem cells in the pancreas? Pancreas. 2005;31:108-118.  [PubMed]  [DOI]
30.  Ianus A, Holz GG, Theise ND, Hussain MA. In vivo derivation of glucose-competent pancreatic endocrine cells from bone marrow without evidence of cell fusion. J Clin Invest. 2003;111:843-850.  [PubMed]  [DOI]
31.  Lee VM, Stoffel M. Bone marrow: an extra-pancreatic hideout for the elusive pancreatic stem cell? J Clin Invest. 2003;111:799-801.  [PubMed]  [DOI]
32.  江 学良, 李 兆申, 崔 慧斐. 骨髓间充质干细胞在胰腺生理更新和病理再生中的作用. 世界华人消化杂志. 2006;14:398-404.  [PubMed]  [DOI]
33.  江 学良, 李 兆申. 骨髓间充质干细胞在大鼠急性坏死性胰腺炎并发多脏器功能障碍中的作用. 中华胰腺病杂志. 2008;18:401-404.  [PubMed]  [DOI]
34.  Brembeck FH, Rustgi AK. The tissue-dependent keratin 19 gene transcription is regulated by GKLF/KLF4 and Sp1. J Biol Chem. 2000;275:28230-28239.  [PubMed]  [DOI]
35.  Kamihata H, Matsubara H, Nishiue T, Fujiyama S, Tsutsumi Y, Ozono R, Masaki H, Mori Y, Iba O, Tateishi E. Implantation of bone marrow mononuclear cells into ischemic myocardium enhances collateral perfusion and regional function via side supply of angioblasts, angiogenic ligands, and cytokines. Circulation. 2001;104:1046-1052.  [PubMed]  [DOI]
36.  Grinnemo KH, Månsson A, Dellgren G, Klingberg D, Wardell E, Drvota V, Tammik C, Holgersson J, Ringdén O, Sylvén C. Xenoreactivity and engraftment of human mesenchymal stem cells transplanted into infarcted rat myocardium. J Thorac Cardiovasc Surg. 2004;127:1293-1300.  [PubMed]  [DOI]
37.  李 立, 应 大君, 朱 楚洪, 糜 建红, 王 廷华, 羊 惠君. 绿色荧光蛋白转基因小鼠骨髓间充质干细胞向内皮细胞定向分化的能力. 中国临床康复. 2005;9:66-67.  [PubMed]  [DOI]
38.  杜 振宗, 任 华, 张 超纪, 宋 剑非, 郑 民, 林 峰. 骨髓间充质干细胞诱导为血管内皮样细胞的实验研究. 北京医学. 2008;30:714-717.  [PubMed]  [DOI]
39.  刘 德伍, 李 晓亮, 张 志安. 血管内皮细胞生长因子联合碱性成纤维细胞生长因子体外诱导人骨髓间充质干细胞分化为血管内皮样细胞. 中国组织工程研究与临床康复. 2008;12:9216-9220.  [PubMed]  [DOI]
40.  陈 毅, 刘 丹平. 三种细胞因子体外联合诱导兔骨髓间充质干细胞向血管内皮细胞的分化. 中国组织工程研究与临床康复. 2008;12:4093-4096.  [PubMed]  [DOI]
41.  Zammaretti P, Zisch AH. Adult 'endothelial progenitor cells'. Renewing vasculature. Int J Biochem Cell Biol. 2005;37:493-503.  [PubMed]  [DOI]
42.  Pompilio G, Capogrossi MC, Cannata A, Galanti A, Biglioli P. Endothelial progenitor cells: a potential versatile tool for the treatment of ischemic cardiomyopathies -- a clinician's point of view. Int J Cardiol. 2004;95 Suppl 1:S34-S37.  [PubMed]  [DOI]
43.  陈 强, 王 秋静, 杨 东旭, 周 余来. 骨髓间充质干细胞对大鼠胰腺损伤的修复. 中国组织工程研究与临床康复. 2010;14:4252-4256.  [PubMed]  [DOI]
44.  Pereda J, Sabater L, Aparisi L, Escobar J, Sandoval J, Viña J, López-Rodas G, Sastre J. Interaction between cytokines and oxidative stress in acute pancreatitis. Curr Med Chem. 2006;13:2775-2787.  [PubMed]  [DOI]
45.  Norman J, Franz M, Messina J, Riker A, Fabri PJ, Rosemurgy AS, Gower WR. Interleukin-1 receptor antagonist decreases severity of experimental acute pancreatitis. Surgery. 1995;117:648-655.  [PubMed]  [DOI]
46.  Zyromski N, Murr MM. Evolving concepts in the pathophysiology of acute pancreatitis. Surgery. 2003;133:235-237.  [PubMed]  [DOI]
47.  庄 岩, 杨 尹默, 王 维民, 万 远廉, 黄 延庭. 急性胰腺炎鼠白细胞介素(IL)1β、IL-18、肿瘤坏死因子α、IL-1β转化酶的表达. 中华实验外科杂志. 2005;22:71-72.  [PubMed]  [DOI]
48.  Ishibashi T, Zhao H, Kawabe K, Oono T, Egashira K, Suzuki K, Nawata H, Takayanagi R, Ito T. Blocking of monocyte chemoattractant protein-1 (MCP-1) activity attenuates the severity of acute pancreatitis in rats. J Gastroenterol. 2008;43:79-85.  [PubMed]  [DOI]
49.  Masamune A, Shimosegawa T. [Anti-cytokine therapy for severe acute pancreatitis]. Nihon Rinsho. 2004;62:2116-2121.  [PubMed]  [DOI]
50.  Christiansen J, Lafvas I, Lindqvist B. Microscopical haematuria after injection of heparin. Acta Med Scand. 1970;188:221-224.  [PubMed]  [DOI]
51.  de Waal Malefyt R, Abrams J, Bennett B, Figdor CG, de Vries JE. Interleukin 10(IL-10) inhibits cytokine synthesis by human monocytes: an autoregulatory role of IL-10 produced by monocytes. J Exp Med. 1991;174:1209-1220.  [PubMed]  [DOI]
52.  Granger J, Remick D. Acute pancreatitis: models, markers, and mediators. Shock. 2005;24 Suppl 1:45-51.  [PubMed]  [DOI]
53.  Zhang Q, Shi S, Liu Y, Uyanne J, Shi Y, Shi S, Le AD. Mesenchymal stem cells derived from human gingiva are capable of immunomodulatory functions and ameliorate inflammation-related tissue destruction in experimental colitis. J Immunol. 2009;183:7787-7798.  [PubMed]  [DOI]
54.  Guo J, Lin GS, Bao CY, Hu ZM, Hu MY. Anti-inflammation role for mesenchymal stem cells transplantation in myocardial infarction. Inflammation. 2007;30:97-104.  [PubMed]  [DOI]
55.  Lee SH, Jang AS, Kim YE, Cha JY, Kim TH, Jung S, Park SK, Lee YK, Won JH, Kim YH. Modulation of cytokine and nitric oxide by mesenchymal stem cell transfer in lung injury/fibrosis. Respir Res. 2010;11:16.  [PubMed]  [DOI]
56.  Ortiz LA, Dutreil M, Fattman C, Pandey AC, Torres G, Go K, Phinney DG. Interleukin 1 receptor antagonist mediates the antiinflammatory and antifibrotic effect of mesenchymal stem cells during lung injury. Proc Natl Acad Sci U S A. 2007;104:11002-11007.  [PubMed]  [DOI]
57.  Götherström C. Immunomodulation by multipotent mesenchymal stromal cells. Transplantation. 2007;84:S35-S37.  [PubMed]  [DOI]
58.  Semedo P, Palasio CG, Oliveira CD, Feitoza CQ, Gonçalves GM, Cenedeze MA, Wang PM, Teixeira VP, Reis MA, Pacheco-Silva A. Early modulation of inflammation by mesenchymal stem cell after acute kidney injury. Int Immunopharmacol. 2009;9:677-682.  [PubMed]  [DOI]
59.  李 德泉, 吴 河水, 潘 景业, 周 蒙滔, 方 军, 吴 广宇, 张 锦辉. 骨髓间充质干细胞对急性出血坏死性胰腺炎大鼠血清细胞因子浓度的影响. 中华普外科杂志. 2010;25:763-764.  [PubMed]  [DOI]
60.  Spaggiari GM, Capobianco A, Abdelrazik H, Becchetti F, Mingari MC, Moretta L. Mesenchymal stem cells inhibit natural killer-cell proliferation, cytotoxicity, and cytokine production: role of indoleamine 2,3-dioxygenase and prostaglandin E2. Blood. 2008;111:1327-1333.  [PubMed]  [DOI]
61.  Beggs KJ, Lyubimov A, Borneman JN, Bartholomew A, Moseley A, Dodds R, Archambault MP, Smith AK, McIntosh KR. Immunologic consequences of multiple, high-dose administration of allogeneic mesenchymal stem cells to baboons. Cell Transplant. 2006;15:711-721.  [PubMed]  [DOI]
62.  Singer NG, Caplan AI. Mesenchymal stem cells: mechanisms of inflammation. Annu Rev Pathol. 2011;6:457-478.  [PubMed]  [DOI]
63.  Ren G, Zhang L, Zhao X, Xu G, Zhang Y, Roberts AI, Zhao RC, Shi Y. Mesenchymal stem cell-mediated immunosuppression occurs via concerted action of chemokines and nitric oxide. Cell Stem Cell. 2008;2:141-150.  [PubMed]  [DOI]
64.  Gonzalez-Rey E, Anderson P, González MA, Rico L, Büscher D, Delgado M. Human adult stem cells derived from adipose tissue protect against experimental colitis and sepsis. Gut. 2009;58:929-939.  [PubMed]  [DOI]
65.  Gonzalez-Rey E, Gonzalez MA, Varela N, O'Valle F, Hernandez-Cortes P, Rico L, Büscher D, Delgado M. Human adipose-derived mesenchymal stem cells reduce inflammatory and T cell responses and induce regulatory T cells in vitro in rheumatoid arthritis. Ann Rheum Dis. 2010;69:241-248.  [PubMed]  [DOI]
66.  Nemeth K, Keane-Myers A, Brown JM, Metcalfe DD, Gorham JD, Bundoc VG, Hodges MG, Jelinek I, Madala S, Karpati S. Bone marrow stromal cells use TGF-beta to suppress allergic responses in a mouse model of ragweed-induced asthma. Proc Natl Acad Sci U S A. 2010;107:5652-5657.  [PubMed]  [DOI]
67.  González MA, Gonzalez-Rey E, Rico L, Büscher D, Delgado M. Adipose-derived mesenchymal stem cells alleviate experimental colitis by inhibiting inflammatory and autoimmune responses. Gastroenterology. 2009;136:978-989.  [PubMed]  [DOI]
68.  D'Alessio FR, Tsushima K, Aggarwal NR, West EE, Willett MH, Britos MF, Pipeling MR, Brower RG, Tuder RM, McDyer JF. CD4+CD25+Foxp3+ Tregs resolve experimental lung injury in mice and are present in humans with acute lung injury. J Clin Invest. 2009;119:2898-2913.  [PubMed]  [DOI]
69.  Pandiyan P, Zheng L, Ishihara S, Reed J, Lenardo MJ. CD4+CD25+Foxp3+ regulatory T cells induce cytokine deprivation-mediated apoptosis of effector CD4+ T cells. Nat Immunol. 2007;8:1353-1362.  [PubMed]  [DOI]
70.  Raffaghello L, Bianchi G, Bertolotto M, Montecucco F, Busca A, Dallegri F, Ottonello L, Pistoia V. Human mesenchymal stem cells inhibit neutrophil apoptosis: a model for neutrophil preservation in the bone marrow niche. Stem Cells. 2008;26:151-162.  [PubMed]  [DOI]