基于生物信息学分析STMN1基因在肝细胞癌中预后及免疫浸润的临床意义

摘要

背景

STMN1(stathmin 1)是一种属于微管失稳蛋白家族的基因, 被功能性肿瘤抑制蛋白p53转录抑制. STMN1首次被鉴定为一种细胞磷酸化蛋白, 并于1983年在白血病中过度表达. STMN1在多种癌症中被发现上调, 如非小细胞肺癌、乳腺癌和胃癌, 其可以在实体肿瘤中诱导细胞分化、增殖和迁移, 并与不良的临床预后相关. 然而, STMN1在肝细胞癌中的作用和机制仍不清楚.

目的

研究STMN1基因在肝细胞癌中的表达情况以及其表达与患者临床特征和预后的关系, 探究STMN1基因在肝细胞癌中作用的分子机制.

方法

从癌症基因图谱(https://portal.gdc.cancer.gov, TCGA)数据库下载肝细胞癌患者的临床信息和高通量RNA测序数据. 利用R(v3.6.2)软件分析STMN1基因在肝细胞癌组织的表达情况, 并分析其与患者临床特征的关系; 用单因素和多因素Cox回归模型分析研究STMN1在肝细胞癌中的预后价值; 基因富集分析用于分析STMN1表达相关通路机制; 使用单样本基因集富集分析(single sample gene set enrichment analysis, ssGSEA)方法分析了肿瘤中24种免疫细胞类型的浸润, 并探讨STMN1与免疫细胞的关系.

结果

对肝细胞癌和正常组织中的STMN1表达进行了分析, 揭示了STMN1在肿瘤组织中高表达(P<0.001); 采用受试者工作特征曲线(receiver operating characteristic curve, ROC)分析STMN1的诊断价值, ROC曲线下面积(AUC)为0.971, 结果表明STMN1的预测能力有较高准确性; 采用卡方检验或Fisher精确检验分析STMN1基因低表达组和高表达组在总体生存率(P = 0.013)、T分期(P = 0.002)、TNM分期(P = 0.008)、年龄(P = 0.006)和肿瘤分级(P<0.001)方面比较, 差异具有统计学意义; STMN1基因高表达组的总生存率、无进展生存率以及疾病特异性生存率均低于低表达组(P<0.01); Cox回归分析显示STMN1的高表达是肝细胞癌患者预后的独立危险因素[HR = 1.808(1.288-2.234), P = 0.014]; GSEA分析结果表明, STMN1基因在肝细胞癌中主要参与细胞周期、卵母细胞减数分裂、T细胞受体信号通路、自然杀伤细胞介导的细胞毒性及剪接体等; 免疫浸润分析显示: STMN1表达与辅助T细胞2、滤泡辅助T细胞和辅助性T细胞密切正相关, 与中性粒细胞、辅助T细胞17、树突状细胞等密切负相关.

结论

STMN1基因在肝细胞癌中表达上调, 并与患者的不良预后相关, 为肝细胞癌患者的独立预后因素, 有望成为肝细胞癌的潜在分子标志物.

关键词: 肝癌; 生物信息学; STMN1基因

核心提要:STMN1(stathmin 1)是一种属于微管失稳蛋白家族的基因, 被功能性肿瘤抑制蛋白p53转录抑制. 本研究通过生物信息学手段证实STMN1基因在肝癌中呈高表达, 并且其高表达与肝癌患者生存预后差有关, 同时其与肿瘤微环境中免疫细胞浸润相关.

Bioinformatics analysis of clinical significance of STMN1 gene in prognosis and immune infiltration in hepatocellular carcinoma

Yu Cui, Tao Yun, Guo-Gang Zhao

Yu Cui, Tao Yun, Guo-Gang Zhao, Department of General Surgery, The Fifth Central Hospital of Tianjin, Tianjin 300450, China

Corresponding author: Guo-Gang Zhao, Deputy Chief Physician, Department of General Surgery, The Fifth Central Hospital of Tianjin, No. 41 Zhejiang Road, Binhai New Area, Tianjin 300450, China. tjsdwzxyyzgg@163.com

Received: March 2, 2022
Revised: April 10, 2022
Accepted: April 18, 2022
Published online: May 8, 2022

Abstract

BACKGROUND

STMN1 (stathmin1), a member of the microtubule destabilizing protein family, is transcriptionally repressed by the functional tumor suppressor protein p53. STMN1 was first identified as a cellular phosphorylated protein overexpressed in leukemia in 1983. STMN1 was found to be upregulated in a variety of cancers, such as non-small cell lung cancer, breast cancer, and gastric cancer, and it can induce cell differentiation, proliferation, and migration in solid tumors and is associated with a poor clinical prognosis. However, the role and mechanism of STMN1 in hepatocellular carcinoma remain unclear.

AIM

To assess the expression of STMN1 gene in hepatocellular carcinoma and its relationship with the clinical characteristics and prognosis of patients, and to explore the molecular mechanism of STMN1 gene in this malignancy.

METHODS

Clinical information and high-throughput RNA-sequencing data of hepatocellular carcinoma patients were downloaded from The Cancer Genome Atlas (https://portal.gdc.cancer.gov, TCGA) database. R (v3.6.2) software was used to analyze the expression of STMN1 gene in hepatocellular carcinoma tissues, and its relationship with clinical characteristics of patients was analyzed. Univariate and multivariate Cox regression models were used to analyze the prognostic value of STMN1 in hepatocellular carcinoma. Gene enrichment analysis was used to analyze STMN1 expression-related pathway mechanisms. ssGSEA method was used to analyze the infiltration of 24 immune cell types in tumors, and to explore the relationship between STMN1 and immune cells.

RESULTS

STMN1 was highly expressed in tumor tissues (P < 0.001). The diagnostic value of STMN1 was assessed by ROC curve analysis, and the area under the ROC curve (AUC) was 0.971. The predictive ability of STMN1 had high accuracy. Chi-square test or Fisher exact test revealed that STMN1 expression was significantly associated with overall survival rate (P = 0.013), T stage (P = 0.002), TNM stage (P = 0.008), age (P = 0.006), and tumor grade (P < 0.001). The overall survival rate, progression-free survival rate, and disease-specific survival rate of the high STMN1 gene expression group were lower than those of the low expression group (P < 0.01). Cox regression analysis showed that the high expression of STMN1 was an independent risk factor for the prognosis of patients with hepatocellular carcinoma (hazard ratio = 1.808, 95% confidence interval: 1.288-2.234, P = 0.014). GSEA analysis showed that STMN1 gene in hepatocellular carcinoma is mainly involved in cell cycle, oocyte meiosis, T cell receptor signaling pathway, natural killer cell-mediated cytotoxicity, and spliceosome. Immune infiltration analysis showed that STMN1 expression was positively correlated with helper T cells 2, follicular helper T cells, and helper T cells, and was negatively correlated with neutrophils, helper T cells 17, and dendritic cells.

CONCLUSION

The expression of STMN1 gene is up-regulated in hepato-cellular carcinoma, which is associated with a poor prognosis of patients. It is an independent prognostic factor for hepatocellular carcinoma patients and is expected to become a potential molecular marker of this malignancy.

Key Words: Hepatocellular carcinoma; Bioinformatics; STMN1 gene

0 引言

肝细胞癌(hepatocellular carcinoma, HCC)是癌症相关死亡的第四大原因[1]. HCC通常由乙型肝炎(hepatitis B virus, HBV)感染和慢性肝病引起, 导致关键驱动基因(如p53和CTNNB)的基因畸变[2]. 虽然系统化治疗显著提高了肝癌患者的五年生存率, 但探索肝癌的潜在分子机制对于帮助制定更有效的治疗策略是非常必要的.

STMN1(stathmin 1)是一种属于微管失稳蛋白家族[3-5]的基因, 被功能性肿瘤抑制蛋白p53[6]转录抑制. STMN1首次被鉴定为一种细胞磷酸化蛋白, 并于1983年在白血病中过度表达[7]. STMN1在多种癌症中被发现上调, 如非小细胞肺癌、乳腺癌和胃癌, 其可以在实体肿瘤中诱导细胞分化、增殖和迁移, 并与不良的临床预后相关[8,9]. 然而, STMN1在肝细胞癌中的作用和机制仍不清楚.

本研究中, 我们探索了STMN1基因在肝细胞癌中的表达情况. 此外我们探索了STMN1表达与肝细胞癌预后和免疫浸润的相关性, 以期为肝细胞癌的诊治提供理论依据.

1 材料和方法

1.1 材料

从癌症基因图谱(https://portal.gdc.cancer.gov, TCGA)数据库下载肝细胞癌患者的临床信息和高通量RNA测序数据. 共424份STMN1基因表达谱样本(374份HCC样本和50份癌旁样本).

使用R语言包将肝细胞癌的原始转录组测序数据(level 3, HTSeq-FPKM)转换为TPM(transcripts per million reads)格式的数据进行差异分析和生存分析. 在后续分析中, 根据Z-score标准化的中值(4.681), 将肝细胞癌分为高STMN1表达组和低STMN1表达组分析STMN1基因表达与患者临床特征的关系.

1.2 方法

STMN1基因表达与患者临床特征及预后关系的分析. 我们使用R软件, 利用pROC包[1.17.0.1版本](用于分析)和ggplot2包[3.3.3版本](用于可视化)分析了来自TCGA肝细胞癌项目中RNAseq数据, 以明确STMN1在预测肝细胞癌能力的准确性; 使用Kaplan-Meier法分析高表达组和低表达组患者总体生存率、无进展生存率和无病生存率的差异, 利用survminer包[0.4.9版本]和survival包[3.2-10版本]用于可视化及生存资料的统计分析.用单因素和多因素Cox回归分析研究STMN1在肝细胞癌中的预后价值, 利用survival包[3.2-10版本]用于生存资料的统计分析.

1.3 STMN1基因富集分析

基因集富集分析(gene set enrichment analysis, GSEA)[10]方法用于分析STMN1表达相关通路, 数据集c2.cp.v7.2.symbols.gmt[Curated]用于通路的分析, 用缺省加权富集法进行富集分析, 随机组合1000次.具有统计学意义的GSEA分析的阈值设置为校正后的P<0.05和FDR<0.25.使用校正的P值和归一化的富集分数(NES)表征富集分析的结果. ggplot2包用于GSEA富集分析和可视化.

1.4 免疫浸润分析

24种不同免疫细胞类型的标记来自Bindea的研究[11]. 使用ssGSEA方法分析了肿瘤中24种免疫细胞类型的浸润. 采用Spearman相关法分析STMN1与上述24种免疫细胞的相关程度, 以及STMN1高低表达组间免疫细胞浸润的分析. GSVA[12]包用于可视化分析.

统计学处理 所有统计分析均在R(v3.6.2)软件中进行. Mann-Whitney U检验用于分析肝细胞癌组织和正常组织的表达差异, 而配对样本t检验用于配对样本分析. 受试者工作特征(receiver operating characteristic curve, ROC)曲线用于分析STMN1表达是否可以作为诊断标志物. 卡方检验或Fisher精确检验用于分析STMN1表达与临床病理特征之间的关系. Cox风险回归分析用于评估STMN1表达的预后价值. 由于TCGA数据库中的临床信息不完整, 并非每个样本都记录了年龄、TNM分期、治疗结果等临床基线信息, 因此不可能对每个临床类别进行完整分析. 因此, 在结果部分的表格中, 样本总数与不同临床类别的样本数之间存在差异. 以P<0.05为差异具有统计学意义.

2 结果

2.1 STMN1表达与临床特征的关系

对肝细胞癌和正常组织中的STMN1表达进行了分析, 揭示了STMN1在肿瘤组织中高表达(P<0.001, 图1A). 同时, 分析STMN1在肝细胞癌组织和配对相邻非肿瘤组织中的表达, 结果也表明STMN1在肿瘤组织中高表达(P<0.001, 图1B). 此外, 采用ROC曲线分析STMN1的诊断价值, ROC曲线下面积(area under ROC curve, AUC)为0.971, 结果表明同甲胎蛋白(alpha-fetoprotein, AFP)相比STMN1的预测能力有较高准确性, 可能是一种潜在的诊断生物标志物(图1C).

图1 重组人微管解聚蛋白1(stathmin 1, STMN1)表达与肝细胞癌的关系. A: 肿瘤组织和正常组织之间STMN1表达水平的差异, ^aP<0.001; B: 肿瘤组织和癌旁组织中STMN1的差异表达, ^aP<0.001; C: 同AFP比较, STMN1表达对肝细胞癌的诊断价值. AFP: 甲胎蛋白.

此外, 采用卡方检验或Fisher精确检验分析STMN1表达与临床特征之间的关系. STMN1基因低表达组和高表达组在总体生存率(P = 0.013)、T分期(P = 0.002)、TNM分期(P = 0.008)、年龄(P = 0.006)和肿瘤分级(P<0.001)方面比较, 差异具有统计学意义(表1). 此外, STMN1表达的单变量Logistic回归也表明STMN1与临床特征之间存在密切关系, 包括T分期[OR = 2.219(1.469-3.372), P<0.001], TNM分期[OR = 1.998(1.309-3.067), P = 0.001)], 年龄[OR = 0.551 (0.365-0.830), P = 0.005]以及肿瘤分级[OR = 2.842 (1.837-4.443), P<0.001] (表2). 在与N分期、M分期的关系中未发现显著差异[OR = 0.308 (0.015-2.442), P = 0.311]、[OR = 0.971(0.115-8.185), P = 0.976].

表1 STMN1表达与肝细胞癌患者临床病理特征的关系(例).

临床特征	低表达组	高表达组	P	统计值	统计方法
总体生存期			0.013	6.24	Chisq.test
生存	134	110
死亡	53	77
T分期			0.002	14.59	Chisq.test
T1	109	74
T2	37	58
T3	32	48
T4	6	7
N分期			0.357		Fisher.test
N0	122	132
N1	3	1
M分期			1.000		Fisher.test
M0	132	136
M1	2	2
TNM分期			0.008		Fisher.test
Ⅰ期	101	72
Ⅱ期	36	51
Ⅲ期	34	51
Ⅳ期	3	2
年龄			0.006	7.54	Chisq.test
≤60岁	75	102
>60岁	112	84
性别			0.269	1.22	Chisq.test
女性	55	66
男性	132	121
肿瘤分级			<0.001	26.71	Chisq.test
G1	36	19
G2	102	76
G3	45	79
G4	1	11

表2 STMN1表达的单变量Logistic回归分析.

临床特征	N	OR	95%CI	P
T分期 (T2&T3&T4 vs T1)	371	2.219	1.469-3.372	<0.001
N分期 (N1 vs N0)	258	0.308	0.015-2.442	0.311
M分期 (M1 vs M0)	272	0.971	0.115-8.185	0.976
TNM分期 (StageⅣ&StageⅢ&StageⅡ vs StageI)	350	1.998	1.309-3.067	0.001
年龄(>60 vs ≤60)	373	0.551	0.365-0.830	0.005
肿瘤分级(G3&G4 vs G1&G2)	369	2.842	1.837-4.443	<0.001

2.2 STMN1在肝细胞癌中表达的预后价值

STMN1表达与总生存率(overall survival, OS)、无进展生存率(progress free survival, PFS)和疾病特异性生存率(disease specific survival, DSS)预后结果的关系如图2A-C所示: STMN1基因高表达组的总生存率、无进展生存率以及疾病特异性生存率均低于低表达组, 统计值分别为[危险比(hazard ratio, HR) = 1.89(1.33-2.69), P<0.001, 图2A]、[HR = 1.88(1.40-2.52), P<0.001, 图2B]和[HR = 1.96(1.25-3.07), P = 0.004, 图2C].

图2 STMN1表达的预后分析. A-C与低表达STMN1的患者相比, 高表达STMN1的患者预后较差, A: STMN1表达与OS的关系, P<0.001; B: STMN1表达与PFS的关系, P<0.001; C: STMN1表达与DSS的关系, P<0.001; D: 基于STMN1表达临床特征的多变量列线图分析; E: 校准图显示了使用多因素Cox回归分析构建的模型的预测性能. OS: 总生存率; PFS: 无进展生存率; DSS: 疾病特异性生存率.

此外, 还进行了单因素Cox回归分析, 结果表明T分期、M分期、临床分期、肿瘤状态和STMN1高表达均为影响患者预后的因素(P<0.05). 多因素Cox回归分析显示STMN1的高表达是肝细胞癌患者预后的独立危险因素[HR = 1.808(1.288-2.234), P = 0.014, 表3]. 肿瘤状态和STMN1表达用于构建肝细胞癌的临床预后风险评分(图2D). 同时, 使用校准图评估模型的预测精度(图2E),结果表明, STMN1表达水平可以更好地预测患者的1年、3年和5年生存率. 总之, 所有这些结果表明STMN1表达水平与肝细胞癌患者的预后相关.

表3 STMN1基因表达与患者预后的单因素和多因素Cox回归分析.

因素	单因素分析			多因素分析
	HR	95%CI	P	HR	95%CI	P
T分期	2.126	1.481-3.052	<0.001	0.490	0.065-3.687	0.489
N分期	2.029	0.497-8.281	0.324
M分期	4.077	1.281-12.973	0.017	2.481	0.574-10.725	0.224
TNM分期	2.090	1.429-3.055	<0.001	4.445	0.576-34.297	0.152
肿瘤状态	2.317	1.590-3.376	<0.001	1.842	1.149-2.952	0.011
年龄	1.205	0.850-1.708	0.295
性别	0.793	0.557-1.130	0.200
肿瘤分级	1.091	0.761-1.564	0.636
STMN1基因表达	1.894	1.333-2.692	<0.001	1.808	1.129-2.896	0.014

2.3 STMN1表达的GSEA分析

GSEA富集分析用于确定STMN1低表达和高表达之间的功能和生物学途径.根据标准化富集分数(NESs), 选择在STMN1基因表达方面最显著的富集信号通路(图3和表4). GSEA分析结果表明, STMN1基因在肝细胞癌中主要参与细胞周期、卵母细胞减数分裂、T细胞受体信号通路、自然杀伤细胞介导的细胞毒性及剪接体等.

图3 GSEA富集结果分析.

表4 GSEA富集结果分析.

名称	ES	NES	P	FDR
KEGG细胞周期	0.66	2.14	0.025	0.019
KEGG卵母细胞减数分裂	0.564	1.804	0.025	0.019
KEGGT细胞受体信号通路	0.545	1.742	0.034	0.025
KEGG自然杀伤细胞介导的细胞毒性	0.505	1.645	0.034	0.025
KEGG剪接体	0.504	1.634	0.034	0.025

KEGG: 京都基因与基因组百科全书; ES: 富集分数; NES: 标准化富集分数; FDR: 错误发现率.

2.4 STMN1表达与免疫浸润的关系

接下来, 在肝细胞癌中评估STMN1表达与24种不同免疫细胞类型之间的关系. STMN1表达与辅助T细胞2、滤泡辅助T细胞和辅助性T细胞密切正相关, 与中性粒细胞、辅助T细胞17、树突状细胞等密切负相关(图4A). 进一步的研究表明, STMN1高低表达组间的免疫细胞包括TFH细胞、Th2细胞、中性粒细胞、NK CD56^bright细胞、pDC细胞、DC细胞等存在显著差异(图4B-D).

图4 STMN1表达与免疫浸润的关系. A: STMN1表达与免疫细胞的关系; B-D: STMN1高表达组和低表达组中不同免疫细胞亚群的富集差异, ^aP<0.05, ^bP<0.01, ^cP<0.001.

3 讨论

肝癌是全球第六大常见癌症, 也是第四大癌症死亡原因[1,13]. 慢性肝病和肝硬化是肝癌最重要的危险因素, 其中病毒性肝炎和过量饮酒是世界范围内的主要危险因素. 糖尿病和肥胖症等慢性疾病会增加患肝癌的风险. 研究还发现[14], 由于睾酮水平较高, 男性的发病率高于女性. 肝细胞癌占原发性肝癌的80%以上[15], 是最常见的肝癌之一, 发病率和死亡率都很高. 大多数肝癌患者的预后较差, 虽然肝硬化患者的监测可用于早期肝肿瘤的诊断, 但大多数肝癌患者在诊断时已为晚期[16], 这使得肝癌的治疗充满挑战. 目前, 只有原位肝移植或手术切除才能治愈[14], 但治疗效果也取决于肿瘤的大小和位置以及肝脏的状态. 尽管化疗和放疗可以延长患者的总体生存期, 但由于肿瘤复发和癌细胞的耐药性, 结果仍然不令人满意[17]. 因此, 发现肝癌组织中异常表达的蛋白并确定其作用机制, 将为肝癌的诊疗提供新的作用靶点.

STMN1最初被鉴定为一种对细胞信号(如生长因子[18])作出磷酸化反应的细胞质蛋白. STMN1也是微管动力学的关键调节器, 通过结合微管蛋白二聚体[19-21]使微管降解. STMN1参与多种疾病, 在细胞过程中发挥关键作用. 作为癌细胞生物学中的一个癌基因, STMN1在包括细胞增殖、分化和细胞周期在内的各种癌症进展中发挥作用.据报道, 胰腺癌中的STMN1水平高于相应的正常组织[22,23]. 在前列腺癌中STMN1的敲除导致细胞增殖和侵袭、肿瘤生长和转移的减少[24]. 在前列腺癌中, 将转染了抗STMN1腺病毒的癌细胞暴露于紫杉醇中可诱导完全抑制增殖和克隆形成, 并显著增加凋亡[25]. 在胃癌中, STMN1的表达与癌症的可治愈性、复发和对辅助治疗的耐药性有关, STMN1基因的敲除抑制了胃癌细胞的增殖, 并使细胞对紫杉醇敏感[26].

在本研究中, 笔者利用TCGA数据库, 发现在肝癌患者的癌症组织中STMN1 mRNA表达量高于正常组织. 单因素Logistic回归分析显示STMN1高表达与肿瘤T分期、TNM分期、年龄以及肿瘤分级相关. 以上结果说明STMN1高表达与肝癌的发生、发展相关. 其次, 采用ROC曲线分析STMN1的诊断价值, 表明其对肝癌的预测能力具有较高准确性. Kaplan-Meier生存曲线结果表明, STMN1高表达导致肝癌患者生存率下降, Cox回归分析显示STMN1表达量是患者预后的独立危险因素, 即STMN1高表达导致了肝癌患者的不良预后. GSEA分析结果表明, STMN1基因在肝细胞癌中主要参与细胞周期、卵母细胞减数分裂、T细胞受体信号通路、自然杀伤细胞介导的细胞毒性及剪接体等信号通路.

此外, 在肝细胞癌中我们分析了STMN1表达与24种不同免疫细胞类型之间的关系, 显示STMN1表达与辅助T细胞2、滤泡辅助T细胞和辅助性T细胞密切正相关, 与中性粒细胞、辅助T细胞17、树突状细胞等密切负相关, 但STMN1与肿瘤浸润免疫细胞的直接关系仍需要组织样本及细胞实验进一步研究.

4 结论

综上所述, STMN1在肝细胞癌中表达异常升高, 与患者的恶性进展特征相关, 有望成为肝细胞癌患者的独立预后因素和潜在分子治疗靶点. 但本研究结果为基于数据库挖掘分析, 具有一定的局限性, 关于STMN1基因是如何调控并促进肝癌的发生、发展及其与各相关信号通路之间的关系仍不甚明确, 尚需大量基础实验及临床试验进一步探讨.

文章亮点

实验背景

肝细胞癌是癌症相关死亡的第四大原因, 其通常由乙型肝炎感染和慢性肝病引起, 导致关键驱动基因的基因畸变. 虽然系统化治疗显著提高了肝癌患者的五年生存率, 但防控形势依旧严峻. 因此, 寻找新的肝癌标志物和潜在治疗靶点, 研究其在肝癌发病过程中的分子机制对于肝癌防控具有重要意义.

实验动机

通过生物信息学探索STMN1在肝细胞癌中的潜在临床意义.

实验目标

探究STMN1是否与肝细胞癌免疫浸润有关, 探索STMN1是否影响肝细胞癌患者的预后.

实验方法

通过生物信息学分析STMN1在肝细胞癌中的表达情况. 探索STMN1对肝细胞癌患者预后的影响. 分析STMN1表达与肝细胞癌免疫浸润的相关性.

实验结果

STMN1基因在肝细胞癌中呈高表达. STMN1高表达的肝癌患者预后差. STMN1表达与肝细胞癌的免疫细胞浸润相关.

实验结论

STMN1基因在肝癌患者呈高表达且与免疫浸润有关.

展望前景

STMN1基因可能为潜在的肝癌免疫治疗和预后标志物.

备注

学科分类: 胃肠病学和肝病学

手稿来源地: 天津市

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科学编辑:张砚梁 制作编辑:张砚梁

参考文献

1.	Villanueva A. Hepatocellular Carcinoma. N Engl J Med. 2019;380:1450-1462.  [PubMed]  [DOI]

2.	Craig AJ, von Felden J, Garcia-Lezana T, Sarcognato S, Villanueva A. Tumour evolution in hepatocellular carcinoma. Nat Rev Gastroenterol Hepatol. 2020;17:139-152.  [PubMed]  [DOI]

3.	Holmfeldt P, Sellin ME, Gullberg M. Predominant regulators of tubulin monomer-polymer partitioning and their implication for cell polarization. Cell Mol Life Sci. 2009;66:3263-3276.  [PubMed]  [DOI]

4.	Sellin ME, Holmfeldt P, Stenmark S, Gullberg M. Global regulation of the interphase microtubule system by abundantly expressed Op18/stathmin. Mol Biol Cell. 2008;19:2897-2906.  [PubMed]  [DOI]

5.	Mistry SJ, Atweh GF. Role of stathmin in the regulation of the mitotic spindle: potential applications in cancer therapy. Mt Sinai J Med. 2002;69:299-304.  [PubMed]  [DOI]

6.	Rubin CI, Atweh GF. The role of stathmin in the regulation of the cell cycle. J Cell Biochem. 2004;93:242-250.  [PubMed]  [DOI]

7.	Sobel A, Tashjian AH. Distinct patterns of cytoplasmic protein phosphorylation related to regulation of synthesis and release of prolactin by GH cells. J Biol Chem. 1983;258:10312-10324.  [PubMed]  [DOI]

8.	Hsieh SY, Huang SF, Yu MC, Yeh TS, Chen TC, Lin YJ, Chang CJ, Sung CM, Lee YL, Hsu CY. Stathmin1 overexpression associated with polyploidy, tumor-cell invasion, early recurrence, and poor prognosis in human hepatoma. Mol Carcinog. 2010;49:476-487.  [PubMed]  [DOI]

9.	Zheng P, Liu YX, Chen L, Liu XH, Xiao ZQ, Zhao L, Li GQ, Zhou J, Ding YQ, Li JM. Stathmin, a new target of PRL-3 identified by proteomic methods, plays a key role in progression and metastasis of colorectal cancer. J Proteome Res. 2010;9:4897-4905.  [PubMed]  [DOI]

10.	Subramanian A, Tamayo P, Mootha VK, Mukherjee S, Ebert BL, Gillette MA, Paulovich A, Pomeroy SL, Golub TR, Lander ES, Mesirov JP. Gene set enrichment analysis: a knowledge-based approach for interpreting genome-wide expression profiles. Proc Natl Acad Sci USA. 2005;102:15545-15550.  [PubMed]  [DOI]

11.

Bindea G, Mlecnik B, Tosolini M, Kirilovsky A, Waldner M, Obenauf AC, Angell H, Fredriksen T, Lafontaine L, Berger A, Bruneval P, Fridman WH, Becker C, Pagès F, Speicher MR, Trajanoski Z, Galon J. Spatiotemporal dynamics of intratumoral immune cells reveal the immune landscape in human cancer. Immunity. 2013;39:782-795.  [PubMed]  [DOI]

12.	Hänzelmann S, Castelo R, Guinney J. GSVA: gene set variation analysis for microarray and RNA-seq data. BMC Bioinformatics. 2013;14:7.  [PubMed]  [DOI]

13.	Bray F, Ferlay J, Soerjomataram I, Siegel RL, Torre LA, Jemal A. Global cancer statistics 2018: GLOBOCAN estimates of incidence and mortality worldwide for 36 cancers in 185 countries. CA Cancer J Clin. 2018;68:394-424.  [PubMed]  [DOI]

14.	Balogh J, Victor D, Asham EH, Burroughs SG, Boktour M, Saharia A, Li X, Ghobrial RM, Monsour HP. Hepatocellular carcinoma: a review. J Hepatocell Carcinoma. 2016;3:41-53.  [PubMed]  [DOI]

15.	Yang JD, Hainaut P, Gores GJ, Amadou A, Plymoth A, Roberts LR. A global view of hepatocellular carcinoma: trends, risk, prevention and management. Nat Rev Gastroenterol Hepatol. 2019;16:589-604.  [PubMed]  [DOI]

16.	In der Stroth L, Tharehalli U, Günes C, Lechel A. Telomeres and Telomerase in the Development of Liver Cancer. Cancers (Basel). 2020;12.  [PubMed]  [DOI]

17.	Allemann P, Demartines N, Bouzourene H, Tempia A, Halkic N. Long-term outcome after liver resection for hepatocellular carcinoma larger than 10 cm. World J Surg. 2013;37:452-458.  [PubMed]  [DOI]

18.	Cassimeris L. The oncoprotein 18/stathmin family of microtubule destabilizers. Curr Opin Cell Biol. 2002;14:18-24.  [PubMed]  [DOI]

19.	Ringhoff DN, Cassimeris L. Gene expression profiles in mouse embryo fibroblasts lacking stathmin, a microtubule regulatory protein, reveal changes in the expression of genes contributing to cell motility. BMC Genomics. 2009;10:343.  [PubMed]  [DOI]

20.	Steinmetz MO. Structure and thermodynamics of the tubulin-stathmin interaction. J Struct Biol. 2007;158:137-147.  [PubMed]  [DOI]

21.	Yip YY, Yeap YY, Bogoyevitch MA, Ng DC. cAMP-dependent protein kinase and c-Jun N-terminal kinase mediate stathmin phosphorylation for the maintenance of interphase microtubules during osmotic stress. J Biol Chem. 2014;289:2157-2169.  [PubMed]  [DOI]

22.

Suzuki K, Watanabe A, Araki K, Yokobori T, Harimoto N, Gantumur D, Hagiwara K, Yamanaka T, Ishii N, Tsukagoshi M, Igarashi T, Kubo N, Gombodorj N, Nishiyama M, Hosouchi Y, Kuwano H, Shirabe K. High STMN1 Expression Is Associated with Tumor Differentiation and Metastasis in Clinical Patients with Pancreatic Cancer. Anticancer Res. 2018;38:939-944.  [PubMed]  [DOI]

23.	Li J, Hu G, Kong F, Wu K, Song K, He J, Sun W. Elevated STMN1 Expression Correlates with Poor Prognosis in Patients with Pancreatic Ductal Adenocarcinoma. Pathol Oncol Res. 2015;21:1013-1020.  [PubMed]  [DOI]

24.

Chakravarthi BVSK, Chandrashekar DS, Agarwal S, Balasubramanya SAH, Pathi SS, Goswami MT, Jing X, Wang R, Mehra R, Asangani IA, Chinnaiyan AM, Manne U, Sonpavde G, Netto GJ, Gordetsky J, Varambally S. miR-34a Regulates Expression of the Stathmin-1 Oncoprotein and Prostate Cancer Progression. Mol Cancer Res. 2018;16:1125-1137.  [PubMed]  [DOI]

25.	Mistry SJ, Atweh GF. Therapeutic interactions between stathmin inhibition and chemotherapeutic agents in prostate cancer. Mol Cancer Ther. 2006;5:3248-3257.  [PubMed]  [DOI]

26.

Bai T, Yokobori T, Altan B, Ide M, Mochiki E, Yanai M, Kimura A, Kogure N, Yanoma T, Suzuki M, Bao P, Kaira K, Asao T, Katayama A, Handa T, Gombodorj N, Nishiyama M, Oyama T, Ogata K, Kuwano H. High STMN1 level is associated with chemo-resistance and poor prognosis in gastric cancer patients. Br J Cancer. 2017;116:1177-1185.  [PubMed]  [DOI]