基础研究
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世界华人消化杂志. 2018-05-08; 26(13): 760-768
在线出版 2018-05-08. doi: 10.11569/wcjd.v26.i13.760
图1
图1 重组慢病毒感染肝细胞LO2/MIHA感染效率的鉴定. A: 重组慢病毒tHBxΔ35组, wt-HBx组, 对照组CTRL分别感染LO2在白光显微镜下; B: 重组慢病毒tHBxΔ35组, wt-HBx组, 对照组CTRL分别感染LO2在荧光显微镜下; C: 重组慢病毒tHBxΔ35组, wt-HBx组, 对照组CTRL分别感染MIHA在白光显微镜下; D: 重组慢病毒tHBxΔ35组, wt-HBx组, 对照组CTRL分别感染MIHA在荧光显微镜下.
图2
图2 重组慢病毒感染肝细胞LO2/MIHA目的基因的蛋白鉴定. Western blot 分析不同组慢病毒分别感染肝细胞LO2和MIHA的HBx蛋白的表达, β-actin作为对照.
图3
图3 tHBxΔ35和wt-HBx 基因在肝细胞的生长效应. A: 重组慢病毒tHBxΔ35组, wt-HBx组, 对照组CTRL分别感染LO2时的生长情况; B重组慢病毒tHBxΔ35组, wt-HBx组, 对照组CTRL分别感染 MIHA时的生长情况.
图4
图4 MTS法检测重组慢病毒感染细胞的增殖性. A: 示重组慢病毒tHBxΔ35组, wt-HBx组, 对照组CTRL分别感染LO2细胞的生长情况; B示重组慢病毒tHBxΔ35组, wt-HBx组, 对照组CTRL分别感染MIHA细胞的生长情况.
图5
图5 集落形成实验检测重组慢病毒感染肝细胞LO2, MIHA后形成的集落. A:重组慢病毒tHBxΔ35组, wt-HBx组, 对照组CTRL分别感染LO2和MIHA细胞而形成的集落; B: 重组慢病毒tHBxΔ35组, wt-HBx组, 对照组CTRL分别感染LO2和MIHA细胞形成集落的计数.
图6
图6 流式细胞仪分析重组慢病毒感染肝细胞LO2/MIHA的细胞周期. A: 重组慢病毒tHBxΔ35组, wt-HBx组, 对照组CTRL分别感染LO2的细胞周期; B重组慢病毒tHBxΔ35组, wt-HBx组, 对照组CTRL分别感染MIHA的细胞周期.
图7
图7 流式细胞仪分析重组慢病毒感染肝细胞LO2/MIHA后的细胞凋亡. A: 重组慢病毒tHBxΔ35组, wt-HBx组, 对照组CTRL分别感染LO2的细胞凋亡率; B: 重组慢病毒tHBxΔ35组, wt-HBx组, 对照组CTRL分别感染MIHA的细胞凋亡率. P>0.05, 无明显统计学差异.

引文著录: 朱冉旭, 羊东晔, 司徒伟基. HBx蛋白及其羧基末端缺失35个氨基酸的突变体对正常肝细胞增殖的影响. 世界华人消化杂志 2018; 26(13): 760-768