|
陆才德,
宁波大学医学院,
宁波市医疗中心李惠利医院普外科
浙江省宁波市
315040
戴德坚,
浙江大学医学院附属第二医院普外科
浙江省杭州市 310009
孟化,
大连医科大学第一附属医院普外科
辽宁省大连市 116011
陆才德,
男,
1951-06生,
浙江温岭人,
汉族.
1990年浙江医科大学医学博士,
1996-1998于日本福井及大阪医科大学进修消化外科并从事肿瘤血管增生和细胞凋亡研究,
现为宁波大学医学院,
宁波市医疗中心李惠利医院外科教研室和普外科主任,
兼任宁波市器官移植研究中心主任,
浙江大学医学院外科学博士生导师, 主要从事肝胆胰外科学和肝移植学的临床和基础研究.
国家自然基金项目,
No. 30171059, No. 30271483
浙江省自然科学基金项目,
No. 302805
通讯作者:
陆才德,
315040,
浙江宁波市兴宁路58号,
宁波大学医学院,
宁波市医疗中心李惠利医院普外科.
lucaide@nbu.edu.cn
电话:
0574-87018600 传真: 0574-87392232
收稿日期:
2005-01-10 接受日期: 2005-01-20
摘要
肿瘤发生发展的研究虽然进入了复杂和多样的癌基因蛋白网络时代,但这些基因的功能效应最终汇聚到一个共同的环节—细胞增生失控和凋亡受阻.Survivin是近年来发现的抗凋亡分子,参与了上述过程,常过表达于肿瘤组织中.因此,Survivin信号通路的开发和利用有助于肿瘤的早期诊断及判断预后,同时为肿瘤生物学治疗提供新的靶位.
关键词:
Survivin; 抗癌
陆才德,
戴德坚, 孟化.
Survivin-值得关注的抗癌治疗靶.
世界华人消化杂志
2005;13(6):701-705
http://www.wjgnet.com/1009-3079/13/701.asp
0 引言
凋亡,也称程序化细胞死亡,是细胞进化过程中高度保守、受机体严密调控、在特定时空中发生的细胞“自杀”现象.他呈现独特的有别于细胞坏死的形态学和生物学特点[1].细胞凋亡对于多细胞生物体的发育和稳态的维持是至关重要的,尤其是在胚胎发育造型、细胞数量的精细调控和具潜在危险性细胞的清除方面发挥重要的作用.细胞凋亡过度或者减弱是许多疾病发病的病理生理学基础.细胞凋亡受到抑制会导致自身免疫性疾病或肿瘤等,而如其不恰当的激活,则会发生组织器官的退行性病变或早衰[2].
多细胞生物主要是通过两个途径遭受凋亡,一是“外源性”途径[3],指通过细胞膜的死亡受体而触发,如肿瘤坏死因子受体(TNF-a)和FAS.另一个是“内源性”途径,即“线粒体”途径[4],由细胞内外凋亡刺激信号发动引起线粒体渗透性增加,释放细胞色素C和SMAC/DIABLO[5-6].这两个凋亡路径通过信号转导,最后触发了细胞凋亡的中心环节Caspase的激活,形成级联反应,使细胞发生凋亡.因此,基于细胞凋亡异常在许多人体恶性肿瘤的发病学上占有十分重要的地位,人们有理由相信随着对细胞凋亡的发病机制的深入认识,可望在恶性肿瘤的治疗学上取得新的突破,以选择诱导肿瘤细胞凋亡为目标的凋亡干预技术可能成为治疗恶性肿瘤的基本策略.然而,以凋亡为基础的癌症治疗靶点的确认和鉴定面临着巨大的挑战.最近研究发现凋亡蛋白抑制因子家族(IAPs)[7]的最小成员Survivin在凋亡和细胞周期的基因调控中发挥重要的作用,由于其表达的特异性及对细胞增生和凋亡的双重作用,使其成为一个非常有吸引力的癌症治疗靶点,并提示在癌症的临床诊断和治疗上有着广阔的应用前景.
1 Survivin的结构和功能
Survivin是凋亡蛋白抑制因子家族(IAPs)的成员,其基因定位于人的染色体17q25,编码蛋白分子质量为16.5
ku[8].IAP家族蛋白包含1-3个串联拷贝的杆状病毒重复区序列(BIR),与此相邻的羧基末端含有一个环指结构[7].只有包含BIR2功能区的IAP蛋白分子才具有结合和抑制Caspase蛋白酶的功能,单一的BIR1、BIR3或者环指结构以及他们任意组合的蛋白体均无此效应.而Survivin只有单一的BIR拷贝,C末端a-螺旋并形成二聚体结构,没有环指结构[7].这一切赋予了Survivin不同于IAP家族其他成员的特殊功能.
最近发现Survivin有两个剪接变异体:Survivin-ΔEx3和Survivin-2B,前者缺乏外显子3,后者保留部分内含子2作为隐蔽的外显子,导致了两个剪接变异体相应的蛋白体结构发生显著的变化,包括BIR结构域的改变[9].通过细胞转染实验证明了Survivin-ΔEx3仍保留抗凋亡特性,而Survivin-2B抗凋亡功能显著下降[10].我们通过对手术切除的胃癌组织中Survivin
mRNA含量分析[11],进一步对Survivin两种变异体的生物学功能进行了研究,发现所有胃癌组织不论组织类型、分级和分期,均有Survivin-ΔEx3、Survivin-2B和野生型Survivin mRNA的存在,含量以野生型Survivin为主.比较Ⅰ、Ⅱ期与Ⅲ、Ⅳ期胃癌组织,野生型Survivin和Survivin-ΔEx3
mRNA的含量基本一致,但
Survivin-2B的含量却随肿瘤分期的增加而下降,这提示Survivin-2B有可能是一种天然的Survivin拮抗因子.
2 Survivin在细胞中的定位
要想彻底了解Survivin蛋白分子的功能,必须弄清其精确的亚细胞定位.然而,一直以来对Survivin的亚细胞定位问题存在着争议,有的将他描述为微管结合蛋白[12],有的将他描述为染色体过客蛋白(chromosome
passenger)[13].最初的研究显示,Survivin被描述为微管蛋白,并定位于有丝分裂纺锤体微管、纺锤体两极,中心体和通过C末端a-螺旋与中间体相联.并进一步指出,Survivin与caspas-3、-7共同定位于中心体微管,并抑制其活性[14-15].这说明了Survivin蛋白在纺锤体微管的定位对有丝分裂期凋亡抑制功能是非常必要的,可能增加他在作用位点的保护活性.最近,Skoufias
et al[13]研究发现,Survivin是一种与动粒联系的染色体过客蛋白[13].Survivin开始与动粒结合在一起,在末期转位并与纺锤体微管的中间带结合,最后在细胞分裂时转位于中体.Whatey
et al[16]进一步研究发现,Survivin以AuroraB/Survivin/INCENP(内着丝粒蛋白)复合物形式存在.以上说明了Survivin对姐妹染色体的分离和胞质分裂的完成是非常必要的.为了更好的了解Survivin的定位与功能及解决上述矛盾,Paola
Fortugno再次对Survivin的亚细胞定位进行了详细的探讨[17],形成了目前对Survivin定位的一致性认识,通过免疫荧光检测发现了两个Survivin蛋白池,一是胞质池,另一个是胞核池,并且Survivin蛋白池的核浆比为1∶6.
80%的Survivin胞质池与有丝分裂期微管、中心体、中期和后期的有丝分裂纺锤体微管、纺锤体两极紧密相关.而20%的Survivin的胞核池与中期染色体着丝粒和后期中央纺锤体中间带紧密联系.进一步细胞同步培养实验发现,在有丝分裂期胞质中的Survivin蛋白突然增高,并且与P34cdc2结合,Survivin的苏氨酸(Thr34)位被P34cdc2磷酸化;相反,核Survivin蛋白在S期积累,不与P34cdc2结合,在Thr34也不磷酸化.这些数据表明了Survivin蛋白对有丝分裂期微管的保护作用以及正常细胞周期进程的各个时相正确切换和细胞分裂增生有机的偶合在一起.
3 Survivin对肿瘤细胞的增生和凋亡的双重作用
尽管对Survivin的结构了解的比较清楚和他的抗凋亡功能得到公认.然而,Survivin在细胞生命活动如凋亡、细胞周期和有丝分裂增中的界面角色和作用机制仍有争议.最初的实验显示[12,14-15],过表达Survivin与其抗凋亡功能密切相关,并且是通过内源性和外源性这两条凋亡信号通路直接或间接抑制caspase-3、-7而实现的.如通过转染使皮肤组织表达Survivin的转基因动物,在放射线的照射之后,皮肤组织并没有发生凋亡[18].转Survivin的胸腺组织并不影响胸腺细胞凋亡,但能增加对凋亡刺激信号的耐受[19].这提示Survivin为细胞分裂增生提供了一个抗凋亡环境.最后一个有力的证据是[20-27],通过反义、核酶、显性突变体抑制Survivin的表达结果导致依赖于Caspase的细胞死亡,从而抑制细胞增生.Survivin凋亡抑制功能高度保守,用果蝇的Survivin同系物-Deterin[28]来替换哺乳动物细胞的Survivin,同样具有抑制凋亡的功能.
尽管Survivin抑制凋亡功能被确立,其作用机制最后还未确定,许多实验证明,Survivin与凋亡通路终端效应子Caspase直接相互作用实现抗凋亡功能[12,14].然而有两个研究提出了质疑[29-30],认为并没有直接抑制Caspase活性.晶体结构分析显示,Survivin缺乏与caspas结合类似“钩(hook
and sinker)”的结构域[31].目前比较趋于一致的认识是,Survivin可能是通过线粒体路径实现抗凋亡功能.在转基因动物实验上显示,Survivin定位于线粒体上,并且与上游的caspase-9和第二凋亡刺激因子(SMACE/DIABLO)相互作用,最后影响终端效应子caspase-3、-7的活性,使细胞发生凋亡[6,32].类似的结果被Survivin功能缺失研究所证实[33].最近转基因动物实验也得到同样的结果,杂合Survivin转基因鼠显示出对依赖于线粒体凋亡信号的敏感性[34].
Survivin除了上述对凋亡的抑制调节作用外,同样在细胞分裂中扮演重要的角色.通过反义技术和显性突变破坏Survivin抗凋亡功能,导致了凋亡的发生和有丝分裂进程异常的双重效应,出现了额外的中心体、多极有丝分裂纺锤体、细胞分裂失败和多核细胞形成[14,22].Survivin敲除鼠的动物实验证实了Survivin在有丝分裂中起着重要的作用,并证明Survivin同样在胚胎发育时期是至关重要的.在起初胚胎发育的2.5
d,纯合子Survivin基因的删除导致灾难性的微管集合失败、有丝分裂纺锤体缺失、紊乱的微管排列和多核细胞形成,最后导致胚胎死亡[35].最近也有研究提示,Survivin作为一个染色体过客蛋白,在细胞分裂晚期参与染色体的分离和胞质分裂的完成[13].通过克隆爪蟾属(xenopus)Survivin基因,研究发现在xenopus早期胚胎中,可检测到在整个细胞分裂中,Survivin蛋白都与染色体分离和胞质分裂有关的分子(AuroraB和INCENP)结合,形成复合物,通过对AuroraB激酶活性的调节,实现对有丝分裂的调控作用[36].从这些数据不难发现,在有丝分裂各个阶段的分子事件中都有Survivin活动的足迹,从而深刻地揭示了Survivin在有丝分裂调控机制中的重要作用.
事实上,细胞凋亡和增生是紧密联系的过程,凋亡是细胞周期的延伸.凋亡蛋白抑制因子Survivin在细胞周期和凋亡的调控中发挥着重要的作用,在细胞分裂周期的进程中,通过Survivin介导的凋亡调控对维持细胞正常分裂增生是非常必要的.因此,Survivin作为联系着增生和凋亡的界面分子,在细胞周期进级、分裂、染色体分离和凋亡等生命活动界面之间起着非常重要的整合和调控作用,并为正常细胞的分裂增生提供了一个抗凋亡前提.
4 Survivin在肿瘤中表达
Survivin显著的特征之一是肿瘤组织和正常组织存在着不同的表达差异,Survivin广泛表达于胚胎发育组织,这有利于胚胎与胎儿内环境的稳定与分化[37];Survivin除了表达于胸腺、CD34+骨髓肝细胞外,在大多数分化的正常组织中沉默[38-39];有趣的是,他过表达于绝大多数常见的恶性肿瘤组织如肺癌[40]、乳腺癌[41]、结肠癌[42]、胃癌[43]、食道癌[44]、胰腺癌[45]、肝癌[46]、子宫内膜癌[47]、卵巢癌[48]、前列腺癌[37]、何杰金氏病[49]、黑色素瘤[21]、等,而在这些癌组织中的相对应的正常组织不表达Survivin,认为Survivin在肿瘤组织中过表达反映了肿瘤细胞过度增生.最近有人发现不管细胞分裂指数的高低,这些细胞都大量表达Survivin;其次,这些大量表达Survivin的肿瘤细胞数远远多于高分裂指数的细胞[50].这提示细胞在发生恶性转化时,Survivin基因转录被大大的激活,并且过表达于处于细胞周期各个时相的所有细胞中,而不是仅仅只表达于有丝分裂期细胞.Survivin表达调控机制目前仍然是一个谜,但确实有些分子参与了Survivin的表达调控.有研究显示野生型p53基因调控着Survivin的表达,Survivin表达抵消了p53依赖性细胞凋亡;反之细胞导入野生型p53基因,抑制Survivin的表达,结果导致了依赖于p53细胞的死亡[50].另外,表基因机制也可能参与了Survivin的表达调控,在正常的卵巢中,Survivin外显子1序列被甲基化而沉默,而在卵巢癌中由于Survivin启动子CPG岛去甲基化而表现为转录活跃,结果细胞过表达Survivin[51].
此外,对临床病例回顾性分析资料显示,Survivin表达阳性的肿瘤患者提示有较短的生存率、高复发率、并且对化放疗产生抵抗,这些与Survivin促进肿瘤细胞增生和凋亡的双重作用是密切相关的[40,42,44].早些时候,我们对胃癌组织Survivin表达研究显示,34.5%的胃癌组织表现不同程度的阳性表达(20-100%),其表达与p53的表达呈正相关,而与胃癌凋亡指数呈负相关.这提示Survivin表达阳性胃癌患者预后不良,并进一步提示p53基因调控着Survivin的表达[43].
5 Survivin作为分子作用靶的确认
把Survivin作为癌症治疗的作用靶主要有两个原因,一是Survivin在肿瘤组织特异性表达,而在正常组织不表达;二是Survivin是维持肿瘤细胞分裂增生的客观要求.以Survivin为基础的分子治疗对肿瘤细胞在分裂增生和凋亡调节中的关键分子进行攻击,有望取得较为确切的疗效,而不影响正常组织.一个有希望的治疗策略是通过产生特异免疫反应来杀伤与Survivin有着密切关系的肿瘤细胞[52-56].最近几个研究小组在体内外通过构建具有免疫活性T细胞来攻击Survivin蛋白分子,导致乳腺癌、白血病和恶性黑色素瘤生长的抑制,提示制备针对Survivin蛋白分子的特异性抗肿瘤疫苗具有潜在的临床应用价值,并可避免对机体有害的自身免疫反应.第二个治疗策略是构建特异性的“拮抗分子”来干扰Survivin的功能,达到治疗肿瘤的目的.如通过反义、核酶和RNA干扰技术来下调内源性Survivin表达水平,以激活caspas效应子,导致细胞凋亡,抑制肿瘤生长,同时增强了肿瘤对抗癌药物的敏感性[14,15,20,22,25].我们通过构建反义Survivin复合物有效下调了肝癌细胞和胰腺癌细胞Survivin表达水平,以达到治疗肿瘤的目的,初步结果令人鼓舞[57].
转染Survivin显性突变体代替肿瘤细胞野生型Survivin基因是Survivin作为分子作用靶抗肿瘤治疗的另一途径.Survivin多肽序列的第34位氨基酸为苏氨酸(Thr34),是细胞周期素依赖激酶P34cdc2的磷酸化位点,该位点的磷酸化对维持Survivin抗凋亡功能是非常重要的,以丙氨酸取代后的突变体(T34A)可以使凋亡抑制功能丧失,以此突变体转染肿瘤细胞,突变体的高度表达可以诱导转染细胞自发凋亡[32].为进一步考察Survivin突变体T34A抑制肿瘤生长的能力,以突变体转染的细胞株YUSAC2/T34A-C4接种小鼠,饮水中给予四环素来抑制突变体的表达(突变体在质粒中的表达受四环素的调控),观察数周全部有肿瘤形成,撤除四环素后使突变体的基因表达,结果肿瘤生长迅速,呈指数生长[58].后来有人用上述突变体在体外转染乳腺癌、前列腺癌、肺癌和结肠癌细胞株,均诱导细胞自发性凋亡.与化疗药物的效果比较显示,突变体的药效与紫杉醇相当,较阿霉素为强,而且突变体能增加肿瘤细胞对紫杉醇药物的敏感性[33].上述结果令人鼓舞,目前已进入临床试验阶段.
另外,Survivin在肿瘤血管新生调节中是至关重要的,正常血管内皮细胞不表达Survivin,而体内外研究证明肿瘤血管内皮细胞过度表达Survivin,使得肿瘤血管内皮细胞凋亡减少,有利于肿瘤生长.进一步研究发现了这一现象不但表现于肿瘤血管内皮细胞的增生期,同时也见于肿瘤血管形成蛋白1介导的内皮细胞非有丝分裂重塑期,因此,反义Survivin能够拮抗肿瘤血管内皮因子的保护作用,从而抑制肿瘤血管的新生,促进肿瘤内皮细胞凋亡,最后导致肿瘤生长受到抑制,达到治疗肿瘤的目的[59].
6 展望
尽管开展对Survivin研究只有6 a,关于Survivin基因和生物学功能研究的成果呈指数增长态势,以Survivin为靶点的肿瘤生物学治疗具有巨大的潜在临床应用价值,目前备受关注.由于Survivin特殊和复杂的亚细胞定位,对肿瘤细胞增生和凋亡的双重作用以及在癌细胞中的过度表达,使其成为肿瘤基因治疗研究的一个理想的靶目标.然而,尚有一些问题亟待解决,如Survivin转基因模型分析、Survivin-knockout动物模型的建立、Survivin相关的生物学分子以及他们之间复杂关系的阐明[60].上述研究无疑将加深我们对Survivin在肿瘤细胞增生和凋亡调控作用的理解,有利于肿瘤发生机制的最后揭示,有助于肿瘤临床治疗的设计.最近临床前研究显示Survivin可直接成为肿瘤治疗的靶点,在肿瘤细胞内导入灭活凋亡抑制基因-Survivin已构成肿瘤的基因治疗中最诱人的策略之一,利用Survivin进行肿瘤的诊断和治疗将有望成为现实.
7 参考文献
1
Kerr JF, Wyllie AH, Currie AR. Apoptosis: a basic biological
phenomenon with wide-ranging implications in
tissue kinetics. Br J Cancer
1972;26:239-57
2 Goyal L. Cell
death inhibition: keeping caspases in check. Cell
2001;104:805-808
3
Krammer PH. CD95's
deadly mission in the immune system. Nature
2000;407:789-795
4
Wang X. The expanding role of mitochondria in apoptosis. Genes
Dev 2001;15:2922-2923
5
Li P, Nijhawan D, Budihardjo I, Srinivasula SM, Ahmad M, Alnemri
ES, Wang X. Cytochrome c and dATP-dependent
formation of Apaf-1/caspase-9 complex
initiates an apoptotic protease cascade. Cell
1997;91:479-489
6
Du C, Fang M, Li Y, Li L, Wang X. Smac, a mitochondrial protein
that promotes cytochrome c-dependent caspase
activation by eliminating IAP inhibition. Cell 2000;102:33-42
7
Salvesen GS, Duckett CS. IAP proteins: blocking the road to death's
door. Nat Rev Mol Cell Biol 2002;3:401-410
8
Ambrosini G, Adida C, Altieri DC. A novel anti-apoptosis gene,
survivin, expressed in cancer and lymphoma.
Nat Med
1997;3:917-921
9
Mahotka C, Wenzel M, Springer E, Gabbert HE, Gerharz CD.
Survivin-deltaEx3 and survivin-2B: two novel splice
variants of the apoptosis inhibitor
survivin with different antiapoptotic properties. Cancer Res
1999;59:6097-6102
10
Rodriguez JA, Span SW, Ferreira CG, Kruyt FA, Giaccone G.
CRM1-mediated nuclear export determines the
cytoplasmic localization of the
antiapoptotic protein Survivin. Exp Cell Res
2002;275:44-53
11
Meng H, Lu CD, Sun YL, Dai DJ, Lee SW, Tanigawa N. Expression level
of wild-type survivin in gastric cancer is
an independent predictor of survival.
World J Gastroenterol 2004;10:3245-3250
12
Li F, Ambrosini G, Chu EY, Plescia J, Tognin S, Marchisio PC,
Altieri DC. Control of apoptosis and mitotic spindle
checkpoint by survivin. Nature
1998;396:580-584
13
Skoufias DA, Mollinari C, Lacroix FB, Margolis RL. Human survivin
is a kinetochore-associated passenger protein.
J Cell Biol
2000;151:1575-1582
14
Li F, Ackermann EJ, Bennett CF, Rothermel AL, Plescia J, Tognin S,
Villa A, Marchisio PC, Altieri DC. Pleiotropic
cell-division defects and apoptosis
induced by interference with survivin function. Nat Cell Biol
1999;1:461-466
15
Jiang X, Wilford C, Duensing S, Munger K, Jones G, Jones D.
Participation of Survivin in mitotic and apoptotic
activities of normal and
tumor-derived cells. J Cell Biochem
2001;83:342-354
16
Wheatley SP, Carvalho A, Vagnarelli P, Earnshaw WC. INCENP is
required for proper targeting of Survivin to the
centromeres and the anaphase spindle
during mitosis. Curr Biol 2001;11:886-890
17
Fortugno P, Wall NR, Giodini A, O'Connor DS, Plescia J, Padgett KM,
Tognin S, Marchisio PC, Altieri DC. Survivin
exists in immunochemically distinct
subcellular pools and is involved in spindle microtubule function. J
Cell Sci
2002;115(Pt 3):575-585
18
Grossman D, Kim PJ, Blanc-Brude OP, Brash DE, Tognin S, Marchisio
PC, Altieri DC. Transgenic expression of survivin
in keratinocytes counteracts UVB-induced
apoptosis and cooperates with loss of p53. J Clin Invest
2001;108:991-999
19
Hikita S, Hatano M, Inoue A, Sekita N, Kobayashi K, Otaki M,
Ogasawara T, Okada S, Hirasawa H, Tokuhisa T.
Overexpression of TIAP/m-survivin in
thymocytes enhances cell proliferation. Mol Immunol
2002;39:289-298
20
Ambrosini G, Adida C, Sirugo G, Altieri DC. Induction of apoptosis
and inhibition of cell proliferation by survivin
gene targeting. J Biol Chem
1998;273:11177-11182
21
Grossman D, McNiff JM, Li F, Altieri DC. Expression and targeting
of the apoptosis inhibitor, survivin, in human
melanoma. J Invest Dermatol
1999;113:1076-1081
22
Chen J, Wu W, Tahir SK, Kroeger PE, Rosenberg SH, Cowsert LM,
Bennett F, Krajewski S, Krajewska M, Welsh K,
Reed JC, Ng SC. Down-regulation of
survivin by antisense oligonucleotides increases apoptosis, inhibits
cytokinesis
and anchorage-independent growth. Neoplasia
2000;2:235-241
23
Olie RA, Simoes-Wust AP, Baumann B, Leech SH, Fabbro D, Stahel RA,
Zangemeister-Wittke U. A novel antisense
oligonucleotide targeting survivin
expression induces apoptosis and sensitizes lung cancer cells to
chemotherapy.
Cancer Res 2000;60:2805-2809
24
Shankar SL, Mani S, O'Guin
KN, Kandimalla ER, Agrawal S, Shafit-Zagardo B. Survivin inhibition
induces human
neural tumor cell death through
caspase-independent and -dependent pathways. J Neurochem
2001;79:426-436
25
Kanwar JR, Shen WP, Kanwar RK, Berg RW, Krissansen GW. Effects of
survivin antagonists on growth of
established tumors and B7-1
immunogene therapy. J Natl Cancer Inst
2001;93:1541-1552
26
Pennati M, Colella G, Folini M, Citti L, Daidone MG, Zaffaroni N.
Ribozyme-mediated attenuation of survivin
expression sensitizes human melanoma
cells to cisplatin-induced apoptosis. J Clin Invest
2002;109:285-286
27
Zhou M, Gu L, Li F, Zhu Y, Woods WG, Findley HW. DNA damage induces
a novel p53-survivin signaling pathway
regulating cell cycle and apoptosis
in acute lymphoblastic leukemia cells. J Pharmacol Exp Ther
2002;303:124-131
28
Jones G, Jones D, Zhou L, Steller H, Chu Y. Deterin, a new
inhibitor of apoptosis from Drosophila melanogaster.
J Biol Chem
2000;275:22157-22165
29
Conway EM, Pollefeyt S, Cornelissen J, DeBaere I, Steiner-Mosonyi
M, Ong K, Baens M, Collen D, Schuh AC.
Three differentially expressed
survivin cDNA variants encode proteins with distinct antiapoptotic
functions.
Blood
2000;95:1435-1442
30
Shin S, Sung BJ, Cho YS, Kim HJ, Ha NC, Hwang JI, Chung CW, Jung YK,
Oh BH. An anti-apoptotic protein human
survivin is a direct inhibitor of
caspase-3 and -7. Biochemistry 2001;40:1117-1123
31
Verdecia MA, Huang H, Dutil E, Kaiser DA, Hunter T, Noel JP.
Structure of the human anti-apoptotic protein
survivin reveals a dimeric
arrangement. Nat Struct Biol 2000;7:602-608
32
O'Connor
DS, Grossman D, Plescia J, Li F, Zhang H, Villa A, Tognin S, Marchisio PC,
Altieri DC. Regulation of apoptosis
at cell division by p34cdc2
phosphorylation of survivin. Proc Natl Acad Sci U S A
2000;97:13103-13107
33 Chen JS, Liu
JC, Shen L, Rau KM, Kuo HP, Li YM, Shi D, Lee YC, Chang KJ, Hung MC.
Cancer-specific activation of the
survivin promoter and its potential
use in gene therapy. Cancer Gene Ther
2004;11:740-747
34
Conway EM, Pollefeyt S, Steiner-Mosonyi M, Luo W, Devriese A, Lupu
F, Bono F, Leducq N, Dol F, Schaeffer P,
Collen D, Herbert JM. Deficiency of
survivin in transgenic mice exacerbates Fas-induced apoptosis via
mitochondrial
pathways. Gastroenterology
2002;123:619-631
35
Uren AG, Wong L, Pakusch M, Fowler KJ, Burrows FJ, Vaux DL, Choo KH.
Survivin and the inner centromere protein
INCENP show similar cell-cycle
localization and gene knockout phenotype. Curr Biol
2000;10:1319-1328
36
Bolton MA, Lan W, Powers SE, McCleland ML, Kuang J, Stukenberg PT.
Aurora B kinase exists in a complex with
survivin and INCENP and its kinase
activity is stimulated by survivin binding and phosphorylation. Mol
Biol Cell
2002;13:3064-3077
37
Kobayashi K, Hatano M, Otaki M, Ogasawara T, Tokuhisa T. Expression
of a murine homologue of the inhibitor of
apoptosis protein is related to cell
proliferation. Proc Natl Acad Sci USA
1999;96:1457-1462
38
Fukuda S, Pelus LM. Regulation of the inhibitor-of-apoptosis family
member survivin in normal cord blood and bone
marrow CD34(+) cells by hematopoietic
growth factors: implication of survivin expression in normal hematopoiesis.
Blood 2001;98:2091-2100
39
Carter BZ, Milella M, Altieri DC, Andreeff M. Cytokine-regulated
expression of survivin in myeloid leukemia.
Blood
2001;97:2784-2790
40
Monzo M, Rosell R, Felip E, Astudillo J, Sanchez JJ, Maestre J,
Martin C, Font A, Barnadas A, Abad A. A novel
anti-apoptosis gene: Re-expression of
survivin messenger RNA as a prognosis marker in non-small-cell lung
cancers.
J Clin Oncol
1999;17:2100-2104
41
Tanaka K, Iwamoto S, Gon G, Nohara T, Iwamoto M, Tanigawa N.
Expression of survivin and its relationship to loss
of apoptosis in breast carcinomas. Clin
Cancer Res 2000;6:127-134
42
Kawasaki H, Altieri DC, Lu CD, Toyoda M, Tenjo T, Tanigawa N.
Inhibition of apoptosis by survivin predicts shorter
survival rates in colorectal cancer. Cancer
Res 1998;58:5071-5074
43
Lu CD, Altieri DC, Tanigawa N. Expression of a novel antiapoptosis
gene, survivin, correlated with tumor cell
apoptosis and p53 accumulation in
gastric carcinomas. Cancer Res
1998;58:1808-1812
44
Kato J, Kuwabara Y, Mitani M, Shinoda N, Sato A, Toyama T, Mitsui
A, Nishiwaki T, Moriyama S, Kudo J, Fujii Y.
Expression of survivin in esophageal
cancer: correlation with the prognosis and response to chemotherapy.
Int J Cancer 2001;95:92-95
45
Satoh K, Kaneko K, Hirota M, Masamune A, Satoh A, Shimosegawa T.
Expression of survivin is correlated with cancer
cell apoptosis and is involved in the
development of human pancreatic duct cell tumors. Cancer
2001;92:271-278
46
Ikeguchi M, Ueta T, Yamane Y, Hirooka Y, Kaibara N. Inducible
nitric oxide synthase and survivin messenger RNA
expression in hepatocellular
carcinoma. Clin Cancer Res 2002;8:3131-3136
47
Saitoh Y, Yaginuma Y, Ishikawa M. Analysis of Bcl-2, Bax and
Survivin genes in uterine cancer. Int J Oncol
1999;15:137-141
48
Yoshida H, Ishiko O, Sumi T, Matsumoto Y, Ogita S. Survivin, bcl-2
and matrix metalloproteinase-2 enhance
progression of clear cell- and
serous-type ovarian carcinomas. Int J Oncol
2001;19:537-542
49
Garcia JF, Camacho FI, Morente M, Fraga M, Montalban C, Alvaro T,
Bellas C, Castano A, Diez A, Flores T, Martin C,
Martinez MA, Mazorra F, Menarguez J,
Mestre MJ, Mollejo M, Saez AI, Sanchez L, Piris MA; Spanish Hodgkin
Lymphoma Study Group. Hodgkin and
Reed-Sternberg cells harbor alterations in the major tumor
suppressor
pathways and cell-cycle checkpoints:
analyses using tissue microarrays. Blood
2003;101:681-689
50
Mirza A, McGuirk M, Hockenberry TN, Wu Q, Ashar H, Black S, Wen SF,
Wang L, Kirschmeier P, Bishop WR,
Nielsen LL, Pickett CB, Liu S. Human
survivin is negatively regulated by wild-type p53 and participates
in
p53-dependent apoptotic pathway. Oncogene
2002;21:2613-2622
51
Hattori M, Sakamoto H, Satoh K, Yamamoto T. DNA demethylase is
expressed in ovarian cancers and the expression
correlates with demethylation of CpG
sites in the promoter region of c-erbB-2 and survivin genes. Cancer
Lett
2001;169:155-164
52
Andersen MH, thor SP. Survivin-a
universal tumor antigen. Histol Histopathol
2002;17:669-675
53
Rohayem J, Diestelkoetter P, Weigle B, Oehmichen A, Schmitz M,
Mehlhorn J, Conrad K, Rieber EP. Antibody response
to the tumor-associated inhibitor of
apoptosis protein survivin in cancer patients. Cancer Res
2000;60:1815-1817
54
Yagihashi A, Asanuma K, Nakamura M, Araya J, Mano Y, Torigoe T,
Kobayashi D, Watanabe N. Detection of anti-survivin
antibody in gastrointestinal cancer
patients. Clin Chem 2001;47:1729-1731
55
Schmitz M, Diestelkoetter P, Weigle B, Schmachtenberg F, Stevanovic
S, Ockert D, Rammensee HG, Rieber EP.
Generation of survivin-specific CD8+
T effector cells by dendritic cells pulsed with protein or selected
peptides.
Cancer Res 2000;60:4845-4849
56
Andersen MH, Pedersen LO, Becker JC, Straten PT. Identification of
a cytotoxic T lymphocyte response to the
apoptosis inhibitor protein survivin
in cancer patients. Cancer Res
2001;61:869-872
57
Dai DJ, Lu CD, Lai RY, Guo JM, Meng H. Effect of survivin targeting
on cell proliferation and apoptosis in pancreatic
cancer cells. Zhonghua Yixue Zazhi 2004;84:1894-1898
58
Grossman D, Kim PJ, Schechner JS, Altieri DC. Inhibition of
melanoma tumor growth in vivo by survivin targeting.
Proc Natl Acad Sci USA
2001;98:635-640
59
O'Connor
DS, Schechner JS, Adida C, Mesri M, Rothermel AL, Li F, Nath AK, Pober JS,
Altieri DC. Control of apoptosis
during angiogenesis by survivin
expression in endothelial cells. Am J Pathol 2000;156:393-398
60
Sohn J, Khaoustov VI, Xie Q, Chung CC, Krishnan B, Yoffe B. The
effect of ursodeoxycholic acid on the survivin in
thapsigargin-induced apoptosis. Cancer
Lett 2003;191:83-92
编辑
张海宁
| |