关键词搜索    关键词:  
  投稿 摘要 PDF   被引用  点击率: 2219 下载率: 402 

ISSN 1009-3079 CN 14-1260/R 世界华人消化杂志 2004515;12(5):1184-1187

14C-氨基比林呼气试验在肝脏疾病中的应用

唐恭顺, 匡安仁


唐恭顺, 匡安仁, 四川大学华西医院核医学科  四川省成都市  610041
项目负责人: 匡安仁, 610041, 四川省成都市, 四川大学华西医院核医学科. tgs028@hotmail.com
电话: 028-85422400    传真: 028-85422696
收稿日期: 2003-11-18    接受日期: 2004-02-01

摘要
肝脏是药物代谢解毒器官,药物介入肝功能试验包括肝细胞微粒体、线粒体和细胞质功能试验三类
. 14C-氨基比林在肝细胞微粒体代谢,14C-氨基比林呼气试验(ABT)定量反映肝细胞功能,ABT值与肝组织学损害严重程度和病情严重程度密切相关. 肝炎、肝硬化、酒精性肝病、脂肪肝和肝癌时ABT值降低,原发性胆汁性肝硬化早期ABT值正常. ABT可及早发现肝移植术后排异反应,可作为肝动脉栓塞化疗术、门腔分流术及药物治疗效果随访手段. ABT是门脉性肝硬化、酒精性肝病、肝移植术的预后因子.14C-氨基比林呼气试验安全、价廉、方便、非侵入,有望临床常规使用.

唐恭顺, 匡安仁. 14C-氨基比林呼气试验在肝脏疾病中的应用. 世界华人消化杂志  2004;12(5):1184-1187
http://www.wjgnet.com/1009-3079/12/1184.asp

0  
引言
肝脏代谢药物的能力可作为肝功能指标. 14C-氨基比林在肝细胞微粒体内代谢,其代谢过程反映肝细胞微粒体功能. 1975年便有人用口服14C-氨基比林法,测定呼出气14CO2,获得肝病患者的药物定量肝代谢功能、诊断肝脏疾病、随访疗效、估计预后[1]. 但目前临床上仍未普遍开展14C-氨基比林呼气试验(ABT).
     
同时,肝脏疾病是危害人类健康的重要疾病群,全世界约有3.5亿人呈乙肝病毒持续感染状态,美国2000年死于肝硬化和肝癌者达26 552人,居死因的第12[2].
       
因此,本文以ABTaminopyrine breath test为关键词,从PubMedOVID数据库收集筛选文献,借助四川大学图书馆医学馆刊物,综述ABT的临床研究成果和存在的问题.

1  
原理和方法
1.1 药物定量肝功能试验
  不同药物有不同代谢途径,反映不同方面的肝细胞功能,现有的药物定量肝功能试验可分为三类.
1.1.1
肝细胞微粒体功能  (1)非选择性细胞色素P450功能试验: 氨基比林呼气试验、安替比林呼吸试验、三甲双酮试验. (2)选择性细胞色素P450功能试验: 氯唑沙宗呼吸试验、非那西丁呼吸试验、乙酰胺甲氧基苯呼吸试验、咖啡因呼吸试验、安定呼吸试验、红霉素呼吸试验、利多卡因呼吸试验、咪唑安定呼吸试验.
1.1.2
肝细胞质功能  半乳糖呼吸试验和苯丙氨酸呼吸试验. 代谢发生在细胞质,因而反映细胞质功能.
1.1.3
肝细胞线粒体功能  a-酮异戊酸呼吸试验和蛋氨酸呼吸试验. 常用于评价酒精导致的肝细胞线粒体损害.   
1.2 ABT
1.2.1
氨基比林代谢  氨基比林体内过程和代谢已较清楚. 口服氨基比林后,血药峰时1.5 h,生物半衰期2-3 h,血浆蛋白结合率15%. 氨基比林主要在肝细胞微粒体代谢,经细胞色素P450同功酶系,特别是UT-2UT-4PB-4MC-5代谢,原形排除很少[3]. 14C标记在氨基比林的氨甲基上,14C-氨基比林和氨基比林的化学性质、生物学行为完全相同. 主要代谢途径: (1) N-去甲基化形成4-甲氨基安替比林、4-氨基安替比林和甲醛. 甲醛又进一步氧化为重碳酸盐,其中30%的重碳酸盐以14CO2形式呼出,其余储存于体内. (2)酰化形成4-乙酰氨基安替比林和4-甲酰氨基安替比林. N-去甲基化是氨基比林代谢的限速步骤[4].
       
一般认为,4-甲氨基安替比林MAA是微粒体产生的主要代谢物[3]. 但也有证据表明口服氨基比林后24 h尿中4-乙酰氨基安替比林含量最高[5].
1.2.2 ABT
方法  (1)口服14C-氨基比林(0.5-2 mCi)后,30-120 min某时点令受试者向液闪瓶内(海胺2 mL,乙醇2 mL)吹气. 2 mmoLCO2与海胺完全反应pH小于9时,指示剂百里酚酞(thymolphthalein)由蓝色变为无色. (2)测定出每mmoL CO214CO2的放射性计数. (3)由每小时每公斤体重平均产生9 mmoL内源性CO2,计算出累计2 h (或其他时段)呼出气的放射性计数. (4)求出累计2 h (或其他时段)呼出气放射性计数占给予量的百分比[1]. 百分比法是目前最常用的计算方法,ABT值正常范围界于5-10%间,各实验室应建立自己的正常值.

2  
临床应用
2.1 慢性肝炎
  ABT值降低是由于慢性肝炎时肝细胞损害、肝纤维化. 肝组织病损越重,ABT值越低. 慢性肝炎患者ABT值与肝组织炎症、纤维化分级和Child-Pugh评分明显相关[6]. 慢性活动性肝炎较慢性迁延性肝炎ABT值降低更明显.
2.2
门脉性肝硬化
2.2.1 ABT与肝硬化严重程度
  大量报道肝硬化患者ABT值明显低于正常人. 肝组织纤维化评分与ABT值呈负相关[7].
        
肝硬化的确诊和组织学损害严重程度的判断以肝活检为金标准,该法患者不易接受. 肝功能损害严重程度常用Child-Pugh评分表示,临床医师又以有无腹水、肝性脑病、门脉高压将肝硬化分为代偿期和非代偿期. 寻找一种能诊断肝硬化、与肝硬化组织学损害程度平行、与Child-Pugh评分呈正相关,代偿期和非代偿期有较大差异的无创性检查是临床医生的愿望. 门脉性肝硬化患者肝细胞数量减少,ABT值下降,较好地满足了这一需求. 如果ABT与传统肝生化检查、超声检查相结合,能更好地达到这一目的.     
2.2.2
疗效评价  ABT反映术后肝功能变化比其他方法灵敏. Horsmans et al [8]报道,门腔静脉分流术后6-12 mo ABT值明显下降,12-24 mo间保持稳定. 而同期凝血酶原时间、血清白蛋白、胆红素无明显改变.
         ABT
可评价肝硬化经颈静脉肝内门体支架分流术疗效[9]. 如术后门静脉压力下降,ABT值没有明显变化,说明疗效好、未损害肝功能.
2.2.3
预后评价  理想的预后分析模型是仅用几个主要因素正确判断患者预后,并能通过观察这几个因素的变化,研究某种处理方案的有效性. ABT反映肝硬化患者肝细胞残留数量,是独立的预后因素,是预后分析模型的理想指标[10].
       
定期测定ABT对评价预后具有重要意义. 进展期肝硬化患者ABT值进行性下降,到死前1aABT下降更明显[10]. 建议每4-6 mo测定1.
       ABT
值也用于评价门腔静脉分流术预后,术后生存1 a以上者术前ABT值明显高于1 a以下者[8]. 
2.3
慢性肝炎和肝硬化的鉴别诊断  慢性肝炎是否有肝硬化是临床医生面临的难题,只有肝活检才能明确诊断. ABT可无创性提示慢性肝炎和肝硬化. 通常ABT值轻度降低时慢性肝炎可能性大,明显降低时肝硬化可能性较大.
       
文献显示,持续丙型肝炎病毒感染者,ABT值在肝组织学正常、炎变、硬化三组间有较大差距(P <0.0 005)[7].
2.4
酒精性肝病  酒精使肝细胞线粒体损害. 长期饮酒使肝细胞脂肪变性,继之酒精性肝炎、肝细胞坏死、纤维化、肝硬化,重者出现肝功能衰竭.
2.4.1
酒精代谢过程  饮入酒精主要在小肠吸收,经肝细胞质内乙醇脱氢酶作用生成乙醛,再经胞质乙醛脱氢酶1和线粒体乙醛脱氢酶2作用生成乙酸,最终生成CO2H2O[11]. 一般认为乙醛脱氢酶2是限速酶,但也有人认为乙醇代谢率决定于肝功能,而不是乙醇脱氢酶和乙醛脱氢酶.
2.4.2 ABT用于诊断  长期饮酒无肝硬化者ABT值增加,有酒精性肝硬化时ABT值降低[12],但血清酶学指标和血浆蛋白不能鉴别饮酒者有无肝硬化.
2.4.3
评价病损程度  ABT值与酒精性肝病组织学损害严重程度平行[13]. 
2.4.4
评价预后  ABT值是预后因素,ABT值越高,预后越好. ABT值小于1%1-2%、大于2%三组的4 a生存率分别是17%35%68%. 酒精性肝硬化ABT值大于2%1 a死亡率仅11%,小于2%者达53.5%[14].
2.4.5
评价疗效  戒酒改善肝功能可用ABT评价. 酒精性代偿性肝硬化者戒酒1 wk后,ABT值明显增加[13]. 戒酒数年后ABT值增加0.14%[15]. 
        
ABT
可用于评价肝药物代谢能力. 苯巴比妥能诱导正常人氨基比林代谢,不能使酒精性肝硬化ABT值回升,因肝脏已耗尽对氨基比林的代谢储备能力.
      
双硫仑戒酒是因其抑制乙醛脱氢酶活性,使血中乙醛增多. 乙醛导致正常人恶心、外周血管阻力下降使血压下降、心输出量增加出现心悸和面色潮红. 但服用双硫仑后的症状个体差异很大,且通常不能使酒精性肝病患者出现上述症状,误导用药. 乙醛增多使ABT值增高且二者相关性好,双硫仑治疗中 ABT值和血浆乙醛浓度呈正相关. 由于ABT简便、间接反映血浆乙醛浓度,可用于指示双硫仑已用量、监测和预防双硫仑-乙醛中毒. 
2.5 原发性胆汁性肝硬化  原发性胆汁性肝硬化是原因不明的肝内胆道疾病. 胆汁郁积不影响氨基比林代谢,ABT用于诊断胆汁淤积性疾病作用有限. 原发性胆汁性肝硬化早期ABT正常,后期肝细胞衰竭时ABT值明显降低. 
       
ABT
可用于鉴别胆汁淤积和肝细胞疾病. 高胆红素血症时,如果ABT值降低,则说明是肝细胞疾病,如果ABT正常则可能是胆汁淤积性肝病. ABT不是原发性胆汁性肝硬化的预后指标[16].
2.6
脂肪肝  包括非酒精性脂肪肝炎(steatohepatitis)和非酒精性脂肪肝病(NASH). 肥胖、糖尿病、高甘油三脂血症等是脂肪肝的危险因素[17]. 脂肪肝肝功能可用ABT、血清胆红素、白蛋白、凝血酶原时间评价. 
       
由于细胞色素P450酶系活性降低,脂肪肝 14CO2排出速度减慢,14CO2排除率较正常人低[1].
2.7
原发性肝癌  原发性肝细胞癌术前一般是依据CT进行分期,再结合体征和症状进行综合考虑是否手术. 术前决策时有一部分患者处于灰色区域,手术的风险是术后肝功能衰竭,此时用ABT可以帮助决定是否手术.
        ABT
可用于评价肝动脉栓塞化疗术(TACE)安全性,Bianco et al [18]观察到15例肝硬化合并肝癌患者TACE术前和术后1 d7 dABT值无明显改变,因此认为TACE安全.    
       
ABT
反映肝细胞药物代谢能力,一般认为TACE术后需待ABT正常才能行肝部分切除术.
2.8
肝移植 
2.8.1
排异反应
  肝移植术后无排异反应时,ABT值进行性增加; 发生排异反应时,ABT值降低[19].
   ABT诊断排异反应比其他指标灵敏,推荐术后连续检测ABT[20]. 转氨酶、胆红素、凝血酶原时间、胆汁排出和体温变化无明显规律. 排异反应者用甲基强的松龙治疗好转后ABT值恢复正常. 因此ABT可用于监测排异反应的疗效.
2.8.2
预后  研究表明,ABT预测移植术预后与腹水和Child-Puff评分相当甚至更好[21-22]. 

3   ABT
的影响因素
慢性肝病患者的近期用药情况、并发症有无、一般情况和基础代谢水平等因素影响ABT,解释结果时应注意如下因素.
3.1
近期用药  许多药物和环境因素干扰ABT. 如苯巴比妥、导眠能、苯妥英、类固醇、螺内酯、双硫仑诱导氨基比林去甲基化,使ABT值增加. 相反,甲氰咪胍、别嘌呤醇、阿苯达唑、细胞增生抑制药、干扰素、流行性感冒接种、接触杀虫剂、外源性雌性激素抑制氨基比林去甲基化,使ABT值降低[23].
3.2
基础代谢率  ABT受基础代谢率的影响较大. 14C-氨基比林的终末代谢产物14CO2将溶入机体CO2中央池,因此机体实际内源性CO2产量影响ABT的结果. 例如强体力活动、发热、甲亢、进餐使ABT值增加,睡眠不足、甲低、低温使ABT值降低.
3.3 并发症  肝硬化并发充血性心力衰竭和慢性肾功能不全时,ABT值降低.
3.4
生活习惯  吸烟使ABT值增加. 酒精抑制氨基比林去甲基化,饮酒后ABT值降低[24].ABT前应当告诉患者禁烟酒.  
3.5
年龄和性别  成人随年龄增长ABT值逐渐降低,性别间ABT无差异. 婴儿ABT值与年龄呈正相关,且男婴ABT明显高于女婴.建议各实验室应建立不同年龄段儿童ABT正常值.
3.6 营养状况  慢性肝病伴营养不良者很常见,其与ABT的关系尚不清楚. 有人认为营养不良,特别是蛋白质摄入不足可使安替比林、茶碱清除率减低,但目前文献数量有限[25-26].
      
另外,胃肠功能也影响口服给药法ABT.

4  
安全性
ABT安全,同一个受试者可以重复检查. 有报道长期服用氨基比林可导致1/40 000患者粒细胞缺乏. ABT口服的氨基比林仅有5×10-6-1×10-5 mmoL,未见引起粒细胞缺乏的报道.一次ABT,每个受试者仅接受0.5- 2.5 mrem照射,低于1次胸透辐照量[15].
       
肝脏疾病肝细胞损害时ABT值降低,ABT值与病情严重程度、肝脏组织学损害程度密切相关. ABT可用于随访疗效和评价预后. ABT简便、无创、廉价、安全,有望成为临床常规项目.
      
目前ABT临床应用不普遍的原因可能与如下因素有关: (1)支持依据研究数量不足: 作为诊断性试验,缺乏前瞻性具有活检资料的大样本多中心研究结果; 作为评价药物、手术、戒酒后的疗效指标研究例数太少,并缺乏与常规生化指标评价疗效时的对比研究和相关性研究; 作为预后因素,应有依据支持ABT是各种预后因素中的最佳因素之一,能准确估计预后,并能反映病毒性或酒精性肝病的病理生理和病损程度. (2)技术因素:  必须使用液闪仪; 受检者需等待30 min-2 h.
      
我们面临如下问题: 药物定量肝功能试验种类多,应选择哪一种进行深入研究? ABT能否作为肝穿刺活检前的筛选试验?ABT能否鉴别诊断肝硬化代偿期和失代偿期?ABT可引用的近期研究文献较少,我们应进一步丰富ABT用于各种肝病诊断、疗效随访、预后价值的研究,为meta分析提供材料.

5    
参考文献
1    Hepner GW, Vesell ES. Quantitative assessment of hepatic function by breath analysis after oral administration of (14C)
      aminopyrine. Ann Intern Med  1975;83:632-638
2    Minino AM, Arias E, Kochanek KD, Murphy SL, Smith BL.Deaths: final data for 2000. Natl Vital Stat Rep  2002;50:1-119
3    Imaoka S, Inoue K, Funae Y.Aminopyrine metabolism by multiple forms of cytochrome P-450 from rat livermicrosomes:
      simultaneous quantitation of four aminopyrine metabolites byhigh-performance liquid chromatography. Arch Biochem
      Biophys  1988;265:159-170
4    Slusher LB, Park SS, Gelboin HV, Vesell ES. Studies on the metabolism of aminopyrine, antipyrine and theophylline using
      monoclonal antibodies to cytochrome P-450 isozymes purified from rat liver. Biochem Pharmacol  1987;36:2359-2367
5    Agundez JA, Martinez C, Benitez J. Metabolism of aminopyrine and derivatives in man: in vivo study of monomorphic 
      and polymorphic metabolic pathways. Xenobiotica  1995;25:417-427
6    Herold C, Heinz R, Niedobitek G, Schneider T, Hahn EG, Schuppan D. Quantitative testing of liver function in relation to
      fibrosis in patients with chronic hepatitis B and C. Liver  2001;21:260-265
7    Giannini E, Fasoli A, Chiarbonello B, Malfatti F, Romagnoli P, Botta F, Testa E, Polegato S, Fumagalli A, Testa
      R.13C-aminopyrine breath test to evaluate severity of disease in patients with chronic hepatitis C virus infection. Aliment
      Pharmacol Ther  2002;16:717-725
8    Horsmans Y, Lejeune D, Geubel AP, Otte JB, Pauwels S. Hepatic [14C]aminopyrine demethylation capacity after portocaval
      shunting. Comparative study in patients with and without arterialization of portal vein. Dig Dis Sci  1993;38:2177-2182
9    Baron A, Gulberg V, Sauter G, Waggershauser T, Reiser M, Gerbes AL. Effects of transjugular intrahepatic portosystemic
      shunt (TIPS) on quantitativeliver function tests. Hepatogastroenterology  1998;45:2315-2321
10  Merkel C, Morabito A, Sacerdoti D, Bolognesi M, Angeli P, Gatta A.Updating prognosis of cirrhosis by Coxs regression
      model using Child-Pugh score and aminopyrine breath test as time-dependent covariates. Ital J Gastroenterol Hepatol 
      1998;30:276-282
11  Li TK, Yin SJ, Crabb DW, O
Connor S, Ramchandani VA. Genetic and environmental influences on alcohol metabolism in
      humans. Alcohol Clin Exp Res  2001;25:136-144
12  Lewis KO, Nicholson G, Lance P, Paton A. Aminopyrine breath test in alcoholic liver disease and in patients on
      enzyme-inducing drugs. J Clin Pathol  1977;30:1040-1043
13  Saunders JB, Lewis KO, Paton A. Early diagnosis of alcoholic cirrhosis by the aminopyrine breath test. Gastroenterology 
      1980;79:112-114
   

    

 

相 关 评 论 : 我要评论
更多>>


相 关 文 章 :
慢性肝病患者骨密度和血清骨代谢的变化
慢性肝病胆小管增生与肝纤维化的关系
良恶性肝病C-erbB2和p53基因表达比较
大蒜素对乙醇性肝损伤的保护作用
肝病患者红细胞cr-1基因组密度多态性与红细胞免疫粘附肿瘤细胞能力的相关性
更多>>